BJAB

Die BJAB-Zelllinie wurde 1973 von einem fünfjährigen afrikanischen Mädchen entwickelt, bei dem ein Epstein-Barr-Virus (EBV)-negatives Burkitt-Lymphom diagnostiziert wurde. Diese spezifische Herkunft ist für die Forschung von entscheidender Bedeutung, da sie ein eindeutiges Modell für die Untersuchung des Burkitt-Lymphoms ohne EBV-Einfluss darstellt, der bei vielen anderen Lymphom-Zelllinien üblich ist. Der EBV-negative Status der BJAB-Zellen ermöglicht es den Forschern, die genetischen und umweltbedingten Faktoren zu untersuchen, die zur Lymphomentstehung beitragen, ohne die störenden Auswirkungen des Virus.

BJAB-Zellen werden häufig in der onkologischen Forschung eingesetzt, insbesondere zur Erforschung der Pathophysiologie des Burkitt-Lymphoms und zur Erprobung therapeutischer Strategien dagegen. Die Zelllinie weist viele der charakteristischen Merkmale des Burkitt-Lymphoms auf, darunter hohe Proliferationsraten und einen charakteristischen Immunphänotyp. Ihre genetische Stabilität und die Robustheit, mit der sie kultiviert werden kann, machen sie zu einem wertvollen Instrument für In-vitro-Experimente zum Verständnis der Lymphom-Biologie und zur Bewertung der Wirksamkeit von Krebsmedikamenten.

37°C, 5%_CO2, befeuchtete Atmosphäre.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Eine Kontamination mit Mykoplasmen wird sowohl durch PCR-basierte Assays als auch durch lumineszenzbasierte Mykoplasmen-Nachweisverfahren ausgeschlossen.

Um sicherzustellen, dass keine Kontamination mit Bakterien, Pilzen oder Hefen vorliegt, werden die Zellkulturen täglich visuell überprüft.

Zur Langzeitkonservierung werden die Fläschchen in flüssigem Stickstoff bei etwa -150 bis -196 °C gelagert. Eine Lagerung bei -80 °C ist nur als kurzer Zwischenschritt vor der Überführung in flüssigen Stickstoff akzeptabel.

Kryokonservierte Zelllinien werden auf Trockeneis in einer validierten, isolierten Verpackung mit ausreichend Kühlmittel versandt, um während des gesamten Transports eine Temperatur von etwa -78 °C aufrechtzuerhalten. Prüfen Sie den Behälter bei Erhalt sofort und bringen Sie die Fläschchen unverzüglich in ein geeignetes Lager.

Bei Cytion stehen wir hinter der Qualität und Lebensfähigkeit unserer Produkte. Wir garantieren, dass unsere Zellen zu Beginn der Kultur für 60 Tage nach dem Versand aus unseren Einrichtungen lebensfähig sind. Wir versichern, dass alle Materialien mit den im Analysezertifikat und/oder Produktblatt beschriebenen Spezifikationen übereinstimmen

Ausführliche Informationen finden Sie in unserer <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantieerklärung