Nalm-6

Die Nalm-6-Zelllinie, die aus dem peripheren Blut eines Patienten mit akuter lymphatischer Leukämie (ALL), einem Vorläufer der B-Zellen, gewonnen wurde, ist zu einem wichtigen Instrument in der Leukämieforschung geworden. Die menschliche Zelllinie Nalm-6 verkörpert die biologischen Merkmale der B-Zell-ALL und bietet einen einzigartigen Einblick in die genomische Landschaft der Krankheit, einschließlich der Instabilität des Genoms und der DNA-Reparaturmechanismen.

Der Nutzen der Nalm-6-Zellen erstreckt sich auf die Untersuchung der Wirksamkeit verfügbarer therapeutischer Ziele und bestehender Resistenzmechanismen. Von besonderem Interesse sind die Empfindlichkeit der Zelllinie gegenüber zytotoxischen Wirkstoffen und ihre Rolle bei der Aufklärung der Reparaturfunktionen der homologen Rekombination (HDR), insbesondere im Hinblick auf die Fähigkeit der HDR-Zellen zur Korrektur von DNA-Schäden.

Die Nalm6-Zelllinie ist ein zuverlässiges Modell für die Untersuchung der komplexen Natur der akuten Leukämie. Sie erleichtert die Erforschung der Genexpressionsprofile, die an der Glykolyse, dem Lipid- und Kohlenhydratstoffwechsel und dem mTORC1-Stoffwechselweg beteiligt sind, was die metabolische Reprogrammierung in Leukämiezellen verdeutlicht. Darüber hinaus hilft die Anwendung der Zelllinie in der reversen Genetik und der gesamten Transkriptomanalyse bei der Entschlüsselung der komplizierten molekularen Netzwerke, die das Fortschreiten und die Resistenz von Leukämie steuern.

Die Forschung mit der Nalm-6-Zelllinie, einschließlich Studien zu klonalen Varianten wie dem Klon G5 und resistenten Zelllinien wie denen mit einer hohen HPRT-Mutationsfrequenz oder C9 mit Resistenzindex, bietet Einblicke in die Heterogenität der Leukämie. Die Erforschung der Leukämiedynamik, insbesondere im Zusammenhang mit der Glukokortikoidresistenz und der MSH2-Expression, unterstreicht das Potenzial für die Entwicklung gezielterer und wirksamerer Therapien für ALL.

Zusammenfassend lässt sich sagen, dass die Nalm-6-Zelllinie eine zentrale Ressource in der Leukämieforschung ist, die durch ihre Anwendungen bei der Untersuchung der genomischen Instabilität, der DNA-Reparaturmechanismen, der Wirksamkeit therapeutischer Ziele, der Resistenzmechanismen und der zugrunde liegenden molekularen Wege, die die komplexe Biologie und Heterogenität der Leukämie beeinflussen, tiefe Einblicke in die B-Zell-ALL bietet.

37°C, 5%_CO2, befeuchtete Atmosphäre.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Eine Kontamination mit Mykoplasmen wird sowohl durch PCR-basierte Assays als auch durch lumineszenzbasierte Mykoplasmen-Nachweisverfahren ausgeschlossen.

Um sicherzustellen, dass keine Kontamination mit Bakterien, Pilzen oder Hefen vorliegt, werden die Zellkulturen täglich visuell überprüft.

Zur Langzeitkonservierung werden die Fläschchen in flüssigem Stickstoff bei etwa -150 bis -196 °C gelagert. Eine Lagerung bei -80 °C ist nur als kurzer Zwischenschritt vor der Überführung in flüssigen Stickstoff akzeptabel.

Kryokonservierte Zelllinien werden auf Trockeneis in einer validierten, isolierten Verpackung mit ausreichend Kühlmittel versandt, um während des gesamten Transports eine Temperatur von etwa -78 °C aufrechtzuerhalten. Prüfen Sie den Behälter bei Erhalt sofort und bringen Sie die Fläschchen unverzüglich in ein geeignetes Lager.

Bei Cytion stehen wir hinter der Qualität und Lebensfähigkeit unserer Produkte. Wir garantieren, dass unsere Zellen zu Beginn der Kultur für 60 Tage nach dem Versand aus unseren Einrichtungen lebensfähig sind. Wir versichern, dass alle Materialien mit den im Analysezertifikat und/oder Produktblatt beschriebenen Spezifikationen übereinstimmen

Ausführliche Informationen finden Sie in unserer <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantieerklärung