ND7/23

La lignée cellulaire ND7/23 est un hybride immortalisé issu de la fusion de neurones du ganglion de la racine dorsale (DRG) de rat néonatal avec un neuroblastome de souris (N18TG2). Cette lignée cellulaire conserve de nombreuses caractéristiques des neurones sensoriels et est fréquemment utilisée pour étudier des processus neurobiologiques tels que la nociception, la neurorégénération et la croissance des neurites. Les cellules ND7/23 constituent un modèle polyvalent permettant de comprendre les mécanismes cellulaires et moléculaires du fonctionnement des neurones sensoriels, en particulier les voies impliquées dans les lésions et la réparation nerveuses. Elles expriment plusieurs récepteurs, canaux ioniques et enzymes liés aux neurones sensoriels et aux nocicepteurs, ce qui les rend adaptées à diverses applications en neurosciences.

Les cellules ND7/23 sont largement utilisées dans la recherche portant sur la différenciation des neurones sensoriels, souvent induite par des facteurs tels que le facteur de croissance nerveuse (NGF) ou le dibutyryl-AMPc (db-cAMP). Les cellules différenciées développent des neurites, expriment des protéines de neurofilaments et présentent une expression accrue de molécules associées à la signalisation nociceptive, telles que les canaux à potentiel récepteur transitoire (TRP), notamment le TRPC4. Ces caractéristiques permettent aux cellules ND7/23 de servir de modèle pour l’étude des effets des facteurs neurotrophiques et pour le criblage d’agents neurothérapeutiques potentiels. Cette lignée cellulaire facilite également la réalisation de tests à haut débit pour analyser la dynamique du calcium, les propriétés électrophysiologiques et les réponses aux médicaments dans les neurones sensoriels.

Dans le cadre d’études sur les lésions nerveuses, les cellules ND7/23 ont permis de mieux comprendre le rôle des canaux TRPC, en particulier du TRPC4, dans la régénération axonale. Des expériences d’inhibition utilisant des ARN en épingle à cheveux courts (shRNA) ciblant le TRPC4 ont montré une réduction de la croissance des neurites, soulignant l’importance de ce canal dans les mécanismes de réparation neuronale. De plus, les cellules ND7/23 constituent un système accessible et reproductible pour l’étude des voies de transduction du signal et des réponses cellulaires à des stimuli externes, notamment les neurotoxines et les analgésiques.

37°C, 5%_CO2, atmosphère humidifiée.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

La contamination par les mycoplasmes est exclue à l'aide de tests basés sur la PCR et de méthodes de détection des mycoplasmes basées sur la luminescence.

Pour s'assurer de l'absence de contamination bactérienne, fongique ou levurienne, les cultures cellulaires font l'objet d'inspections visuelles quotidiennes.

Pour une conservation à long terme, placer les flacons dans de l'azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre -150 et -196 °C environ. Le stockage à -80 °C n'est acceptable qu'en tant qu'étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l'azote liquide.

Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées sur glace sèche dans des emballages isolés et validés, avec suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d'environ -78 °C tout au long du transport. À la réception, inspecter immédiatement le conteneur et transférer sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié.

Chez Cytion, nous nous portons garants de la qualité et de la viabilité de nos produits. Nous garantissons que nos cellules seront viables au début de la culture pendant 60 jours après l'expédition de nos installations. Nous assurons que tous les matériaux sont conformes aux spécifications décrites dans le certificat d'analyse et/ou la fiche produit

Pour plus de détails, veuillez consulter notre <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default""> Déclaration de garantie