Kasumi-1 Cellen

De Kasumi-1 cellijn werd afgeleid uit het perifere bloed van een 7-jarige Japanse jongen met acute myeloïde leukemie (AML), specifiek het FAB M2 subtype, tijdens een recidief na beenmergtransplantatie. Deze cellijn is een waardevolle bron voor onderzoekers die hematologische maligniteiten bestuderen, vooral die waarbij de t(8;21) chromosomale translocatie betrokken is. Deze translocatie leidt tot de vorming van het fusiegen AML1-ETO, een kritieke factor in bepaalde subtypes van AML. Kasumi-1 cellen dienen dus als een essentieel model voor het onderzoeken van de moleculaire mechanismen van AML en het testen van potentiële therapeutische benaderingen.

Kasumi-1 cellen bezitten kenmerken van zowel myeloïde als macrofagen, waardoor ze bijzonder nuttig zijn voor studies naar myeloïde differentiatie. Deze cellen kunnen worden geïnduceerd om te differentiëren in macrofaag-achtige cellen wanneer ze worden gekweekt met fosforbol 12-myristaat 13-acetaat (TPA), waardoor een robuust systeem ontstaat voor het onderzoeken van de paden die betrokken zijn bij de toewijding aan en differentiatie van myeloïde lijnen. Deze differentiatiecapaciteit vergroot de bruikbaarheid van Kasumi-1 cellen in onderzoek dat zich richt op zowel AML-biologie als bredere myeloïde celontwikkelingsprocessen.

37°C, 5%_CO2, bevochtigde atmosfeer.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mycoplasmaverontreiniging wordt uitgesloten met zowel PCR-gebaseerde testen als op luminescentie gebaseerde mycoplasmadetectiemethoden.

Om er zeker van te zijn dat er geen besmetting is met bacteriën, schimmels of gisten, worden de celculturen dagelijks onderworpen aan visuele inspecties.

Voor langdurige bewaring plaatst u flesjes in vloeibare stikstof in dampfase bij ongeveer -150 tot -196 °C. Opslag bij -80 °C is alleen aanvaardbaar als korte tussenstap vóór overbrenging naar vloeibare stikstof.

Gecryopreserveerde cellijnen worden verzonden op droog ijs in gevalideerde, geïsoleerde verpakkingen met voldoende koelmiddel om gedurende het transport ongeveer -78 °C te handhaven. Inspecteer de verpakking onmiddellijk na ontvangst en breng de flacons onverwijld over naar de juiste opslagplaats.

Bij Cytion staan we achter de kwaliteit en levensvatbaarheid van onze producten. We garanderen dat onze cellen levensvatbaar zijn bij het begin van de kweek gedurende 60 dagen na verzending vanuit onze faciliteiten. We verzekeren dat alle materialen voldoen aan de specificaties beschreven in het analysecertificaat en/of productblad

Raadpleeg voor volledige informatie onze <a href=""/Wie-zijn-wij/Garantie/"" hreflang=""x-default"">Garantieverklaring