Kasumi-1-celler

Kasumi-1-cellelinjen ble avledet fra perifert blod fra en 7 år gammel japansk gutt med akutt myeloid leukemi (AML), spesielt FAB M2-subtypen, under et tilbakefall etter benmargstransplantasjon. Denne cellelinjen er en verdifull ressurs for forskere som studerer hematologiske maligniteter, spesielt de som involverer den kromosomale translokasjonen t(8;21). Denne translokasjonen fører til dannelsen av fusjonsgenet AML1-ETO, som er en kritisk faktor i visse undertyper av AML. Kasumi-1-celler er derfor en viktig modell for å undersøke de molekylære mekanismene ved AML og teste potensielle behandlingsmetoder.

Kasumi-1-celler har egenskaper som kjennetegner både myeloide og makrofage linjer, noe som gjør dem spesielt nyttige for studier av myeloid differensiering. Disse cellene kan induseres til å differensiere til makrofaglignende celler når de dyrkes med phorbol 12-myristat 13-acetat (TPA), noe som gjør dem til et robust system for utforskning av veiene som er involvert i myeloide linjers binding og differensiering. Denne differensieringskapasiteten gjør Kasumi-1-cellene enda mer anvendelige i forskning som fokuserer på både AML-biologi og myeloide cellers utviklingsprosesser i et bredere perspektiv.

37 °C, 5 %_CO2, befuktet atmosfære.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mykoplasma-kontaminering utelukkes ved hjelp av både PCR-baserte analyser og luminescensbaserte metoder for påvisning av mykoplasma.

For å sikre at det ikke finnes bakterie-, sopp- eller gjærkontaminering, blir cellekulturene inspisert visuelt hver dag.

For langtidsoppbevaring plasseres hetteglassene i flytende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Lagring ved -80 °C er kun akseptabelt som et kort mellomtrinn før overføring til flytende nitrogen.

Kryopreserverte cellelinjer sendes på tørris i validert, isolert emballasje med tilstrekkelig kjølemiddel til å opprettholde en temperatur på ca. -78 °C under hele transporten. Ved mottak skal beholderen inspiseres umiddelbart, og hetteglassene skal straks overføres til egnet lagringsplass.

Hos Cytion står vi bak kvaliteten og levedyktigheten til produktene våre. Vi garanterer at cellene våre vil være levedyktige ved starten av dyrkingen i 60 dager etter at de er sendt fra våre anlegg. Vi forsikrer at alle materialer er i samsvar med spesifikasjonene som er beskrevet i analysesertifikatet og/eller produktarket

For fullstendig informasjon, se vår <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantierklæring