Células Kasumi-1

La línea celular Kasumi-1 se obtuvo de la sangre periférica de un niño japonés de 7 años con leucemia mieloide aguda (LMA), concretamente del subtipo FAB M2, durante una recaída tras un trasplante de médula ósea. Esta línea celular es un recurso valioso para los investigadores que estudian las neoplasias hematológicas, especialmente las que implican la translocación cromosómica t(8;21). Esta translocación conduce a la formación del gen de fusión AML1-ETO, un factor crítico en ciertos subtipos de LMA. Así pues, las células Kasumi-1 constituyen un modelo esencial para investigar los mecanismos moleculares de la LMA y probar posibles enfoques terapéuticos.

Las células Kasumi-1 poseen características tanto del linaje mieloide como del macrófago, lo que las hace especialmente útiles para estudios sobre diferenciación mieloide. Estas células pueden ser inducidas a diferenciarse en células similares a los macrófagos cuando se cultivan con forbol 12-miristato 13-acetato (TPA), proporcionando un sistema robusto para explorar las vías implicadas en el compromiso y diferenciación del linaje mieloide. Esta capacidad de diferenciación aumenta la utilidad de las células Kasumi-1 en investigaciones centradas tanto en la biología de la LMA como en procesos más amplios de desarrollo de células mieloides.

37°C, 5%_CO2, atmósfera humidificada.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

La contaminación por micoplasma se excluye utilizando tanto ensayos basados en la PCR como métodos de detección de micoplasma basados en la luminiscencia.

Para garantizar la ausencia de contaminación bacteriana, fúngica o por levaduras, los cultivos celulares se someten a inspecciones visuales diarias.

Para la conservación a largo plazo, colocar los viales en nitrógeno líquido en fase vapor a una temperatura aproximada de -150 a -196 °C. El almacenamiento a -80 °C sólo es aceptable como breve paso intermedio antes de la transferencia al nitrógeno líquido.

Las líneas celulares crioconservadas se envían en hielo seco en envases validados y aislados con suficiente refrigerante para mantener aproximadamente -78 °C durante el tránsito. A la recepción, inspeccione el envase inmediatamente y transfiera los viales sin demora al almacenamiento adecuado.

En Cytion, respaldamos la calidad y viabilidad de nuestros productos. Garantizamos que nuestras células serán viables al inicio del cultivo durante los 60 días posteriores al envío desde nuestras instalaciones. Aseguramos que todos los materiales se ajustan a las especificaciones descritas en el Certificado de Análisis y/o Hoja de Producto

Para más información, consulte nuestra <a href=""/Quiénes somos/Garantía/"" hreflang=""x-default"">Declaración de garantía