Kasumi-1-celler

Kasumi-1-cellelinjen stammer fra det perifere blod fra en 7-årig japansk dreng med akut myeloid leukæmi (AML), specifikt FAB M2-subtypen, under et tilbagefald efter knoglemarvstransplantation. Denne cellelinje er en værdifuld ressource for forskere, der studerer hæmatologiske maligniteter, især dem, der involverer den kromosomale translokation t(8;21). Denne translokation fører til dannelsen af AML1-ETO-fusionsgenet, som er en kritisk faktor i visse undertyper af AML. Kasumi-1-celler er derfor en vigtig model til at undersøge de molekylære mekanismer ved AML og teste potentielle terapeutiske tilgange.

Kasumi-1-celler har egenskaber fra både myeloide og makrofage linjer, hvilket gør dem særligt nyttige til undersøgelser af myeloid differentiering. Disse celler kan induceres til at differentiere sig til makrofaglignende celler, når de dyrkes med phorbol 12-myristat 13-acetat (TPA), hvilket giver et robust system til at udforske de veje, der er involveret i myeloide linjers engagement og differentiering. Denne differentieringskapacitet øger Kasumi-1-cellernes anvendelighed i forskning med fokus på både AML-biologi og bredere myeloide celleudviklingsprocesser.

37°C, 5%_CO2, befugtet atmosfære.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mycoplasma-kontaminering udelukkes ved hjælp af både PCR-baserede assays og luminescensbaserede mycoplasma-detektionsmetoder.

For at sikre, at der ikke er nogen bakterie-, svampe- eller gærforurening, underkastes cellekulturerne daglige visuelle inspektioner.

For langtidsopbevaring anbringes hætteglas i flydende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Opbevaring ved -80 °C er kun acceptabelt som et kort mellemtrin før overførsel til flydende nitrogen.

Kryopræserverede cellelinjer sendes på tøris i valideret, isoleret emballage med tilstrækkeligt kølemiddel til at opretholde ca. -78 °C under hele transporten. Ved modtagelse skal beholderen straks inspiceres, og hætteglassene skal straks overføres til passende opbevaring.

Hos Cytion står vi inde for vores produkters kvalitet og levedygtighed. Vi garanterer, at vores celler vil være levedygtige ved kulturens start i 60 dage efter afsendelse fra vores faciliteter. Vi sikrer, at alle materialer er i overensstemmelse med de specifikationer, der er beskrevet i analysecertifikatet og/eller produktarket

For alle detaljer henvises til vores <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantierklæring