Kasumi-1 Celler

Kasumi-1-cellinjen härrör från perifert blod från en 7-årig japansk pojke med akut myeloisk leukemi (AML), specifikt FAB M2-subtypen, under ett återfall efter benmärgstransplantation. Denna cellinje är en värdefull resurs för forskare som studerar hematologiska maligniteter, särskilt sådana som involverar den kromosomala translokationen t(8;21). Denna translokation leder till bildandet av fusionsgenen AML1-ETO, en kritisk faktor i vissa subtyper av AML. Kasumi-1-celler är därför en viktig modell för att undersöka de molekylära mekanismerna bakom AML och testa potentiella terapeutiska metoder.

Kasumi-1-celler har egenskaper som kännetecknar både myeloida och makrofagiska linjer, vilket gör dem särskilt användbara för studier av myeloid differentiering. Dessa celler kan induceras att differentiera till makrofagliknande celler när de odlas med phorbol 12-myristate 13-acetate (TPA), vilket ger ett robust system för att utforska de vägar som är involverade i myeloid linjebindning och differentiering. Denna differentieringskapacitet ökar användbarheten av Kasumi-1-celler i forskning som fokuserar på både AML-biologi och bredare myeloida cellutvecklingsprocesser.

37°C, 5%_CO2, befuktad atmosfär.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mykoplasmakontaminering utesluts med hjälp av både PCR-baserade analyser och luminiscensbaserade metoder för mykoplasmadiagnostik.

För att säkerställa att det inte finns någon kontaminering av bakterier, svamp eller jäst utsätts cellkulturerna för dagliga visuella inspektioner.

För långtidsförvaring, placera flaskorna i flytande kväve i ångfas vid ca -150 till -196 °C. Förvaring vid -80 °C är acceptabelt endast som ett kort mellanliggande steg innan överföring till flytande kväve.

Kryopreserverade cellinjer skickas på torris i validerade, isolerade förpackningar med tillräckligt med kylmedel för att hålla cirka -78 °C under hela transporten. Vid mottagandet ska behållaren omedelbart inspekteras och flaskorna utan dröjsmål överföras till lämplig förvaring.

På Cytion står vi bakom våra produkters kvalitet och livskraft. Vi garanterar att våra celler är livsdugliga vid odlingens början i 60 dagar efter leverans från våra anläggningar. Vi försäkrar att allt material överensstämmer med de specifikationer som beskrivs i analyscertifikatet och/eller produktbladet

För fullständig information, se vår <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantiförklaring