HEC-1-A

HEC-1-A-celler er en velkarakteriseret human endometrieadenokarcinom-cellelinje, der stammer fra ondartet væv fra en 71-årig kaukasisk kvinde. Denne cellelinje, der blev etableret i midten af 1970'erne, bruges i vid udstrækning i gynækologisk kræftforskning, især til undersøgelse af endometriekarcinom.

Morfologisk set er HEC-1-A-celler epitellignende og danner et monolag af polygonale celler, når de dyrkes. De udviser et robust og adhærent vækstmønster, som er typisk for epitelceller, der stammer fra solide tumorer. De morfologiske egenskaber ved HEC-1-A-celler gør dem til en værdifuld model til at studere cellulær adfærd, der er central for kræftprogression, såsom vedhæftning, migration og invasion.

Genotypisk har HEC-1-A-celler flere genetiske afvigelser, der er relevante for kræftbiologi, herunder mutationer i vigtige regulerende gener som p53 og PTEN, som begge ofte er muterede i endometriecancer. Disse genetiske egenskaber bidrager til cellernes anvendelighed i forskningen i de molekylære baggrunde for endometriecancer og de cellulære veje, der fører til tumorvækst og resistens over for behandling.

Forskning med HEC-1-A-celler har i høj grad fremmet vores forståelse af endometriecancer, især hvad angår hormonelle påvirkninger, genetiske mutationer og reaktioner på kemoterapeutiske midler. Som følge heraf er denne cellelinje fortsat afgørende for udviklingen af mere effektive diagnostiske og terapeutiske strategier for endometriecarcinom.

37°C, 5%_CO2, befugtet atmosfære.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mycoplasma-kontaminering udelukkes ved hjælp af både PCR-baserede assays og luminescensbaserede mycoplasma-detektionsmetoder.

For at sikre, at der ikke er nogen bakterie-, svampe- eller gærforurening, underkastes cellekulturerne daglige visuelle inspektioner.

For langtidsopbevaring anbringes hætteglas i flydende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Opbevaring ved -80 °C er kun acceptabelt som et kort mellemtrin før overførsel til flydende nitrogen.

Kryopræserverede cellelinjer sendes på tøris i valideret, isoleret emballage med tilstrækkeligt kølemiddel til at opretholde ca. -78 °C under hele transporten. Ved modtagelse skal beholderen straks inspiceres, og hætteglassene skal straks overføres til passende opbevaring.

Hos Cytion står vi inde for vores produkters kvalitet og levedygtighed. Vi garanterer, at vores celler vil være levedygtige ved kulturens start i 60 dage efter afsendelse fra vores faciliteter. Vi sikrer, at alle materialer er i overensstemmelse med de specifikationer, der er beskrevet i analysecertifikatet og/eller produktarket

For alle detaljer henvises til vores <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantierklæring