HCC1143

La linea cellulare HCC1143 deriva da un carcinoma mammario umano triplo-negativo (TNBC), specificamente privo dell'espressione dei recettori degli estrogeni (ER), del progesterone (PR) e di HER2. Questa linea cellulare è nota per il suo utilizzo nella modellazione dei fenotipi aggressivi del cancro al seno e nella comprensione dei meccanismi alla base della resistenza ai trattamenti. HCC1143 presenta caratteristiche distinte, tra cui l'eterogeneità delle sottopopolazioni cellulari, che contribuiscono alla sua importanza nella ricerca incentrata sulla plasticità fenotipica e sulle transizioni di stato delle cellule tumorali. Gli studi condotti su HCC1143 hanno dimostrato che diversi stati cellulari all'interno della linea possono passare da uno stato di differenziazione luminale, basale e mesenchimale sotto pressione terapeutica, evidenziando il suo ruolo nello studio dei cambiamenti fenotipici indotti dalla terapia e dei meccanismi di resistenza ai farmaci.

Le cellule HCC1143 sono state utilizzate in vari contesti sperimentali, tra cui lo studio dei meccanismi di resistenza ad agenti chemioterapici come il paclitaxel. Il sequenziamento dell'RNA di una singola cellula (scRNA-seq) ha rivelato sottopopolazioni con profili di espressione genica differenziali legati alla resistenza al trattamento. Ad esempio, sottopopolazioni specifiche come le cellule AKR1C3+, IDO1+ e HEY1+ hanno mostrato una maggiore rappresentazione in seguito a un trattamento prolungato con paclitaxel, suggerendo il loro ruolo come fenotipi resistenti ai farmaci. Questi sottotipi sono associati a percorsi che coinvolgono le specie reattive dell'ossigeno (ROS), le risposte infiammatorie e la regolazione del ciclo cellulare, indicando adattamenti complessi che facilitano la sopravvivenza sotto stress chemioterapico.

La ricerca sull'HCC1143 si è estesa anche agli studi di terapia mirata. L'applicazione di inibitori mirati a componenti come ADAM-17 ha mostrato un potenziale nel ridurre l'invasività e la proliferazione di questa linea cellulare, sostenendo la sua applicazione come modello per testare nuove strategie antitumorali. Questi risultati sottolineano il valore di HCC1143 per l'esplorazione sia delle risposte terapeutiche sia delle dinamiche cellulari sottostanti che determinano la resistenza ai farmaci nella TNBC.

37°C, 5%_CO2, atmosfera umidificata.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

La contaminazione da micoplasma viene esclusa utilizzando sia saggi basati sulla PCR sia metodi di rilevamento del micoplasma basati sulla luminescenza.

Per garantire l'assenza di contaminazione batterica, fungina o da lieviti, le colture cellulari sono sottoposte a ispezioni visive quotidiane.

Per la conservazione a lungo termine, porre le fiale in azoto liquido in fase vapore a una temperatura compresa tra -150 e -196 °C circa. La conservazione a -80 °C è accettabile solo come breve fase intermedia prima del trasferimento in azoto liquido.

Le linee cellulari crioconservate vengono spedite su ghiaccio secco in confezioni isolate e convalidate, con una quantità di refrigerante sufficiente a mantenere circa -78 °C durante il trasporto. Al ricevimento, ispezionare immediatamente il contenitore e trasferire immediatamente le fiale in un luogo di conservazione appropriato.

Noi di Cytion garantiamo la qualità e la vitalità dei nostri prodotti. Garantiamo che le nostre cellule saranno vitali all'inizio della coltura per 60 giorni dopo la spedizione dai nostri stabilimenti. Assicuriamo che tutti i materiali sono conformi alle specifiche descritte nel Certificato di Analisi e/o nella Scheda Prodotto

Per tutti i dettagli, consultare la nostra <a href=""/Chi-siamo/Garanzia/"" hreflang=""x-default"">Dichiarazione di Garanzia