JIMT-1

La lignée cellulaire JIMT-1 est dérivée d’un carcinome mammaire humain HER2-positif et est connue pour sa résistance au trastuzumab, un traitement ciblant HER2 couramment utilisé. Cela fait de JIMT-1 un modèle précieux pour l’étude des mécanismes de résistance aux traitements anti-HER2 et pour le développement de nouvelles stratégies thérapeutiques. Contrairement à de nombreuses autres lignées cellulaires de cancer du sein HER2-positif, la lignée JIMT-1 reproduit des cas cliniques où l’on observe une réponse initiale aux traitements ciblant HER2, suivie d’une résistance. Cette caractéristique en a fait un outil essentiel pour évaluer l’efficacité de nouveaux médicaments et de traitements combinés visant à surmonter la résistance au trastuzumab.

Les cellules JIMT-1 sont également utilisées dans des études portant sur l’interaction entre HER2 et d’autres voies de signalisation, telles que celles impliquant le récepteur du facteur de croissance épidermique (EGFR). L’interaction entre ces voies contribue à la résistance des cellules aux thérapies conventionnelles. Des recherches ont montré que les cellules JIMT-1 réagissent de manière variable à différents inhibiteurs de tyrosine kinase (ITK) et à des conjugués anticorps-médicaments (ACM). Par exemple, bien que cette lignée cellulaire présente une résistance au trastuzumab-emtansine (T-DM1) et ne montre qu’une sensibilité partielle à des agents plus récents comme le trastuzumab-deruxtecan (T-DXd), il a été démontré que d’autres ADC, tels que le disitamab vedotin (DV), pourraient offrir une efficacité accrue.

Des études in vitro soulignent la polyvalence de la lignée JIMT-1 pour le criblage de médicaments ciblant non seulement HER2, mais aussi d’autres voies moléculaires. Ces études fournissent des données essentielles pour évaluer les effets synergiques des traitements combinés associant des ADC et des ITK ou de nouvelles thérapies ciblées. Le comportement de cette lignée cellulaire dans divers scénarios de résistance aux médicaments souligne son importance dans le développement préclinique des médicaments, en particulier pour le cancer du sein HER2-positif présentant une résistance acquise ou intrinsèque.

37 °C, 5 % _de CO_₂, atmosphère humidifiée.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

La contamination par les mycoplasmes est exclue à l'aide de tests basés sur la PCR et de méthodes de détection des mycoplasmes par luminescence.

Afin de s’assurer qu’il n’y a aucune contamination bactérienne, fongique ou par des levures, les cultures cellulaires font l’objet d’inspections visuelles quotidiennes.

Pour une conservation à long terme, placez les flacons dans de l’azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre environ −150 et −196 °C. L’entreposage à −80 °C n’est acceptable qu’à titre d’étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l’azote liquide.

Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées dans de la glace sèche, dans un emballage isotherme validé contenant suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d’environ −78 °C pendant tout le transport. À la réception, inspectez immédiatement le conteneur et transférez sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié.

Chez Cytion, nous garantissons la qualité et la viabilité de nos produits. Nous garantissons que nos cellules seront viables au début de la culture pendant 60 jours à compter de leur expédition depuis nos installations. Nous assurons que tous les matériaux sont conformes aux spécifications décrites dans le certificat d’analyse et/ou la fiche technique du produit.

Pour plus de détails, veuillez consulter notre déclaration de garantie.