AU565

Die Zelllinie AU565 stammt von einem menschlichen Brustkrebs und ist als HER2-positiv eingestuft, was sie zu einem wertvollen Modell für die Untersuchung von HER2-gerichteten Therapien wie Trastuzumab (TZM) macht. Diese Zellen werden häufig zur Untersuchung des Verhaltens von Brustkrebs eingesetzt, insbesondere im Hinblick auf die gezielte Verabreichung von Medikamenten und metastatische Prozesse. Die Forschung mit AU565-Zellen hat gezeigt, dass sie eine signifikante HER2-Expression an der Plasmamembran aufweisen, was Studien zur Bindungseffizienz und Internalisierung von monoklonalen Anti-HER2-Antikörpern wie TZM erleichtert. AU565-Zellen zeigen eine effiziente TZM-Bindung an der Membran mit anschließender Anreicherung in intrazellulären Kompartimenten, was Einblicke in die endozytischen und Trafficking-Mechanismen gewährt, die an der Aufnahme und dem Verbleib von TZM in Tumorzellen beteiligt sind. Dieses einzigartige Verhalten macht AU565 zu einem unverwechselbaren Modell im Vergleich zu anderen HER2-positiven Zelllinien und unterstützt seine Verwendung bei der Erforschung der Wirksamkeit von Medikamenten und der Zellmembrandynamik.

AU565-Zellen dienen auch als Modell für die Untersuchung des Metastasierungsverhaltens, insbesondere der transendothelialen Migration, die ein kritischer Schritt bei der Krebsmetastasierung ist. Als schwach invasive Zelllinie ist die Fähigkeit von AU565, durch Endothelzellschichten zu wandern, in hohem Maße von der Signalübertragung durch fokale Adhäsionskinase (FAK) abhängig, die während der Migration die Interaktion mit der extrazellulären Matrix und den Endothelzellen erleichtert. Die Hemmung der FAK-Aktivität in AU565-Zellen führt nachweislich zu einer Verringerung ihrer Migrationsrate, was die Rolle von FAK bei der Zellmotilität unterstreicht und auf ihr Potenzial als therapeutisches Ziel zur Begrenzung des metastatischen Fortschreitens hindeutet. Darüber hinaus zeigen AU565-Zellen Reaktionen auf Veränderungen in der Mikroumgebung des Tumors, wie z. B. Unterschiede in der Kollagendichte, die sich auf die Wirksamkeit der Medikamentenabgabe und die Resistenz auswirken können. Diese Eigenschaften machen die AU565-Zellen zu einem leistungsfähigen Modell für die Untersuchung von HER2-gerichteten Therapien und der Einflüsse der Tumormikroumgebung auf die Behandlungsergebnisse.

37°C, 5%_CO2, befeuchtete Atmosphäre.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Eine Kontamination mit Mykoplasmen wird sowohl durch PCR-basierte Assays als auch durch lumineszenzbasierte Mykoplasmen-Nachweisverfahren ausgeschlossen.

Um sicherzustellen, dass keine Kontamination mit Bakterien, Pilzen oder Hefen vorliegt, werden die Zellkulturen täglich visuell überprüft.

Zur Langzeitkonservierung werden die Fläschchen in flüssigem Stickstoff bei etwa -150 bis -196 °C gelagert. Eine Lagerung bei -80 °C ist nur als kurzer Zwischenschritt vor der Überführung in flüssigen Stickstoff akzeptabel.

Kryokonservierte Zelllinien werden auf Trockeneis in einer validierten, isolierten Verpackung mit ausreichend Kühlmittel versandt, um während des gesamten Transports eine Temperatur von etwa -78 °C aufrechtzuerhalten. Prüfen Sie den Behälter bei Erhalt sofort und bringen Sie die Fläschchen unverzüglich in ein geeignetes Lager.

Bei Cytion stehen wir hinter der Qualität und Lebensfähigkeit unserer Produkte. Wir garantieren, dass unsere Zellen zu Beginn der Kultur für 60 Tage nach dem Versand aus unseren Einrichtungen lebensfähig sind. Wir versichern, dass alle Materialien mit den im Analysezertifikat und/oder Produktblatt beschriebenen Spezifikationen übereinstimmen

Ausführliche Informationen finden Sie in unserer <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantieerklärung