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SK-OV-3
Tissu
Ovaire
Maladie
Cystadénocarcinome séreux
Site métastatique
Ascite
Synonymes
SKOV-3, SK-OV3, SK.OV.3, SKOV3, Skov3, SKO3

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SK-OV-3

Cell line · Référence du produit 300342

SK-OV-3 cells, also known as SKOV3 cells, were derived from the ascitic fluid of a 64-year-old Caucasian female with ovarian cancer, are used in the study...

€430.00hors taxes et frais de port
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Lot
Recommandé (lot le plus récent)
  • CoA
1

01Informations générales

Description

Les cellules SK-OV-3, également connues sous le nom de cellules SKOV3, proviennent du liquide ascitique d'une femme caucasienne de 64 ans atteinte d'un cancer de l'ovaire. Elles sont utilisées dans l'étude du cystadénocarcinome séreux, un sous-type de carcinome ovarien. Ces cellules sont connues pour leur résistance au facteur de nécrose tumorale et à divers médicaments cytotoxiques, dont le cisplatine, ce qui souligne les défis posés par la chimiothérapie dans le traitement du cancer de l'ovaire et en fait un excellent modèle pour étudier les mécanismes sous-jacents à la résistance au cisplatine et explorer de nouvelles stratégies thérapeutiques.

Le système antioxydant, y compris le système antioxydant thiorédoxine (Trx), joue un rôle crucial dans la survie et la résistance des cellules SK-OV-3, offrant une cible pour les interventions visant à sensibiliser les cellules cancéreuses à la chimiothérapie. L'utilisation de composés tels que la quercétine pour moduler le système antioxydant et induire l'apoptose dans les cellules SK-OV-3 met en évidence le potentiel des antioxydants alimentaires dans le traitement du cancer.

Outre leur rôle dans l'étude de la résistance aux médicaments, les cellules SK-OV-3 sont utilisées pour étudier le comportement invasif des cellules de carcinome ovarien et l'interaction entre les cellules cancéreuses et le microenvironnement tumoral, y compris le rôle des macrophages M0 et M2 dans la progression tumorale. L'application des cellules SK-OV-3 dans la recherche sur le cancer s'étend au développement de modèles de xénogreffes et à l'utilisation de gènes rapporteurs, tels que firefly-Luc, pour surveiller la croissance tumorale et les métastases in vivo.

Dans l'ensemble, les cellules SK-OV-3 constituent un modèle essentiel pour comprendre la complexité du cancer de l'ovaire, depuis les mécanismes moléculaires à l'origine de la résistance et de la signalisation œstrogénique jusqu'à l'interaction entre les cellules cancéreuses et le microenvironnement tumoral.

Tissu
Ovaire
Maladie
Cystadénocarcinome séreux
Site métastatique
Ascite
Synonymes
  • SKOV-3
  • SK-OV3
  • SK.OV.3
  • SKOV3
  • Skov3
  • SKO3

02Classification

Organisme
Humain
Sexe
Femme
Propriétés de croissance
Adepte
Niveau de biosécurité
1

03Caractéristiques

Tumorigène
Forme un adénocarcinome modérément bien différencié compatible avec une tumeur ovarienne primaire
Caryotype
(P16) hypodiploïde à hypotétraploïde avec dicentriques et grand télocentrique

04Identifiants

Référence
SK-OV-3 (numéro de catalogue Cytion 300342)
Numéro d'identification fiscale NCBI
9606
Cellosaurus
CVCL_0532

05Expression et sensibilité

Isoenzymes
PGM3, 1, PGM1, 1-2, ES-D, 1, Me-2, 1, AK-1, 1, GLO-1, 1-2, G6PD, B, Fréquence du phénotype Produit : 0.0311

06Manipulation et culture

Milieu de culture
DMEM:Ham's F12 (1:1), w : 3.1 g/L Glucose, w : 2.5 mM L-Glutamine, w : 15 mM HEPES, w : 0.5 mM Sodium pyruvate, w : 1.2 g/L NaHCO3 (numéro d'article Cytion 820400a)
Atmosphère d'incubation

37°C, 5%CO2, atmosphère humidifiée.

Compléments alimentaires
Compléter le milieu avec 10% de FBS
Réactif de dissociation
Accutase
Repiquage
Retirer l'ancien milieu des cellules adhérentes et les laver avec du PBS dépourvu de calcium et de magnésium. Pour les flacons T25, utiliser 3-5 ml de PBS, et pour les flacons T75, 5-10 ml. Ensuite, recouvrir complètement les cellules avec Accutase, en utilisant 1 à 2 ml pour les flacons T25 et 2,5 ml pour les flacons T75. Laisser les cellules incuber à température ambiante pendant 8-10 minutes pour les détacher. Après incubation, mélanger délicatement les cellules avec 10 ml de milieu pour les remettre en suspension, puis centrifuger à 300xg pendant 3 minutes. Jeter le surnageant, remettre les cellules en suspension dans du milieu frais et les transférer dans de nouveaux flacons contenant déjà du milieu frais.
Densité de semis
1 x 104 cellules/cm2
Récupération après le dégel
Après décongélation, ensemencer les cellules à raison de 5 x 104 cellules/cm2 et laisser les cellules se remettre du processus de congélation et adhérer pendant au moins 24 heures.
Décongélation et mise en culture
  1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

  2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

  3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

  4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

  5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

  6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

  7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

  8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

07Contrôle qualité et cryoconservation

Stérilité

La contamination par les mycoplasmes est exclue à l'aide de tests basés sur la PCR et de méthodes de détection des mycoplasmes basées sur la luminescence.

Pour s'assurer de l'absence de contamination bactérienne, fongique ou levurienne, les cultures cellulaires font l'objet d'inspections visuelles quotidiennes.

Milieu de congélation
Comme milieu de cryoconservation, nous utilisons un milieu de croissance complet (comprenant du FBS) + 10 % de DMSO pour une viabilité adéquate après décongélation, ou CM-1 (numéro de catalogue 800100 de Cytion), qui comprend des osmoprotectants et des stabilisateurs métaboliques optimisés pour améliorer la récupération et réduire le stress induit par la cryogénisation.
Conditions de stockage

Pour une conservation à long terme, placer les flacons dans de l'azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre -150 et -196 °C environ. Le stockage à -80 °C n'est acceptable qu'en tant qu'étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l'azote liquide.

Conditions de livraison

Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées sur glace sèche dans des emballages isolés et validés, avec suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d'environ -78 °C tout au long du transport. À la réception, inspecter immédiatement le conteneur et transférer sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié.

08Donateur

Âge du donneur
64 ans
Origine ethnique
Caucasien