DSL-6B-C2

De DSL-6B/C2-cellijn is afgeleid van het DSL-6 transplanteerbaar acinaircelcarcinoom van de alvleesklier, dat specifiek is vastgesteld op basis van een tumormodel in een mannelijke Lewis rat. Dit model is in 1986 ontstaan uit een primair acinaircelcarcinoom dat zich ontwikkelde na intraperitoneale toediening van azaserine, een krachtig carcinogeen. Het belang van deze cellijn komt voort uit het feit dat ze haar oorsprong vindt in onderzoek naar alvleesklierkanker, waarbij haar nut voor het bestuderen van de biologie en onderliggende mechanismen van alvleeskliercelcarcinomen benadrukt wordt.

In eerste instantie, na vestiging in kweek, vertoonden DSL-6B/C2-cellen de karakteristieke productie van amylase, een kenmerk van de exocriene functie van de alvleesklier. Deze exocriene enzymproductie was echter van voorbijgaande aard en stopte binnen één tot twee weken na de kweek. Deze verandering in de fenotypische expressie is opmerkelijk omdat het een aanpassing aan de in vitro omgeving suggereert, wat de bruikbaarheid van de cellen in bepaalde soorten biologische testen kan beïnvloeden. Het verlies van amylaseproductie zou ook veranderingen in celdifferentiatie of het ontstaan van subpopulaties binnen de gekweekte cellen kunnen weerspiegelen, wat van cruciaal belang zou kunnen zijn voor onderzoekers die zich richten op de evolutie van tumorcelkenmerken in vitro.

37°C, 5%_CO2, bevochtigde atmosfeer.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mycoplasmaverontreiniging wordt uitgesloten met zowel PCR-gebaseerde testen als op luminescentie gebaseerde mycoplasmadetectiemethoden.

Om er zeker van te zijn dat er geen besmetting is met bacteriën, schimmels of gisten, worden de celculturen dagelijks onderworpen aan visuele inspecties.

Voor langdurige bewaring plaatst u flesjes in vloeibare stikstof in dampfase bij ongeveer -150 tot -196 °C. Opslag bij -80 °C is alleen aanvaardbaar als korte tussenstap vóór overbrenging naar vloeibare stikstof.

Gecryopreserveerde cellijnen worden verzonden op droog ijs in gevalideerde, geïsoleerde verpakkingen met voldoende koelmiddel om gedurende het transport ongeveer -78 °C te handhaven. Inspecteer de verpakking onmiddellijk na ontvangst en breng de flacons onverwijld over naar de juiste opslagplaats.

Bij Cytion staan we achter de kwaliteit en levensvatbaarheid van onze producten. We garanderen dat onze cellen levensvatbaar zijn bij het begin van de kweek gedurende 60 dagen na verzending vanuit onze faciliteiten. We verzekeren dat alle materialen voldoen aan de specificaties beschreven in het analysecertificaat en/of productblad

Raadpleeg voor volledige informatie onze <a href=""/Wie-zijn-wij/Garantie/"" hreflang=""x-default"">Garantieverklaring