DSL-6B-C2

DSL-6B/C2-solulinja on peräisin DSL-6-siirrettävissä olevasta haiman acinarisolusyövästä, joka on nimenomaan perustettu urospuolisen Lewisin rotan kasvainmallista. Tämä malli aloitettiin vuonna 1986 primaarisesta acinarisolusyövästä, joka kehittyi voimakkaan karsinogeenin atsaseriinin vatsansisäisen annon jälkeen. Tämän solulinjan merkitys johtuu siitä, että se on peräisin haimasyövän tutkimuksesta, mikä korostaa sen hyödyllisyyttä haiman acinussolusyöpien biologian ja niiden taustalla olevien mekanismien tutkimisessa.

Aluksi DSL-6B/C2-solut tuottivat viljelyn jälkeen tyypillistä amylaasia, joka on haiman eksokriinisen toiminnan tunnusmerkki. Tämä eksokriinisen entsyymin tuotanto oli kuitenkin ohimenevää, sillä se lakkasi yhden tai kahden viikon kuluessa viljelystä. Tämä muutos fenotyyppisessä ilmentymisessä on huomattava, koska se viittaa sopeutumiseen in vitro -ympäristöön, mikä voi vaikuttaa solujen käyttökelpoisuuteen tietyntyyppisissä biologisissa kokeissa. Amylaasituotannon häviäminen saattaa myös heijastaa muutoksia solujen erilaistumisessa tai viljeltyjen solujen sisällä syntyvien alaryhmien syntymistä, mikä voi olla ratkaisevaa tutkijoille, jotka keskittyvät kasvainsolujen ominaisuuksien kehittymiseen in vitro.

37 °C, 5 %_CO2, kostutettu ilmakehä.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mykoplasmakontaminaatio suljetaan pois sekä PCR-pohjaisilla määrityksillä että luminesenssiin perustuvilla mykoplasman osoitusmenetelmillä.

Bakteeri-, sieni- tai hiivakontaminaation välttämiseksi soluviljelmät tarkastetaan päivittäin silmämääräisesti.

Pitkäaikaissäilytystä varten injektiopullot asetetaan höyryfaasissa olevaan nestemäiseen typpeen noin -150 - -196 °C:een. Säilytys -80 °C:ssa on hyväksyttävää vain lyhyenä välivaiheena ennen siirtoa nestemäiseen typpeen.

Kryosäilytetyt solulinjat kuljetetaan kuivajäässä validoidussa, eristetyssä pakkauksessa, jossa on riittävästi kylmäainetta, jotta lämpötila pysyy noin -78 °C:ssa koko kuljetuksen ajan. Pakkaus on tarkastettava välittömästi sen vastaanottamisen jälkeen ja injektiopullot on siirrettävä viipymättä asianmukaiseen varastoon.

Me Cytionilla seisomme tuotteidemme laadun ja elinkelpoisuuden takana. Takaamme, että solumme ovat elinkelpoisia viljelyn alkaessa 60 päivän ajan sen jälkeen, kun ne on lähetetty laitoksestamme. Vakuutamme, että kaikki materiaalit ovat analyysitodistuksessa ja/tai tuoteselosteessa kuvattujen eritelmien mukaisia

Lisätietoja on <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang="""x-default"">Takuulausumassa