DSL-6B-C2

Linia komórkowa DSL-6B/C2 wywodzi się z przeszczepialnego raka komórek szpikowych trzustki DSL-6, stworzonego specjalnie na podstawie modelu guza u samca szczura Lewis. Model ten został zapoczątkowany w 1986 r. z pierwotnego raka komórek gruczołowych, który rozwinął się po dootrzewnowym podaniu azaseryny, silnego czynnika rakotwórczego. Znaczenie tej linii komórkowej wynika z jej pochodzenia w badaniach nad rakiem trzustki, podkreślając jej użyteczność w badaniu biologii i mechanizmów leżących u podstaw raka komórek groniastych trzustki.

Początkowo, po założeniu hodowli, komórki DSL-6B/C2 wykazywały charakterystyczną produkcję amylazy, cechę charakterystyczną funkcji zewnątrzwydzielniczej trzustki. Produkcja enzymów egzokrynnych była jednak przejściowa i ustała w ciągu jednego do dwóch tygodni hodowli. Ta zmiana ekspresji fenotypowej jest godna uwagi, ponieważ sugeruje adaptację do środowiska in vitro, co może wpływać na użyteczność komórek w niektórych typach testów biologicznych. Utrata produkcji amylazy może również odzwierciedlać zmiany w różnicowaniu komórek lub pojawienie się subpopulacji w hodowanych komórkach, co może mieć kluczowe znaczenie dla badaczy koncentrujących się na ewolucji cech komórek nowotworowych in vitro.

37°C, 5%_CO2, nawilżona atmosfera.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Zanieczyszczenie mykoplazmą jest wykluczane przy użyciu zarówno testów opartych na PCR, jak i metod wykrywania mykoplazmy opartych na luminescencji.

Aby upewnić się, że nie ma zanieczyszczenia bakteriami, grzybami lub drożdżami, hodowle komórkowe są poddawane codziennym kontrolom wizualnym.

W celu długotrwałego przechowywania należy umieścić fiolki w ciekłym azocie w fazie lotnej w temperaturze od -150 do -196 °C. Przechowywanie w temperaturze -80 °C jest dopuszczalne tylko jako krótki etap przejściowy przed przeniesieniem do ciekłego azotu.

Linie komórkowe poddane kriokonserwacji są wysyłane w suchym lodzie w zatwierdzonych, izolowanych opakowaniach z wystarczającą ilością czynnika chłodniczego, aby utrzymać temperaturę około -78°C przez cały czas transportu. Po otrzymaniu przesyłki należy natychmiast sprawdzić pojemnik i bezzwłocznie przenieść fiolki do odpowiedniego miejsca przechowywania.

W Cytion gwarantujemy jakość i żywotność naszych produktów. Gwarantujemy, że nasze komórki będą żywotne na początku hodowli przez 60 dni po wysyłce z naszych zakładów. Zapewniamy, że wszystkie materiały są zgodne ze specyfikacjami opisanymi w certyfikacie analizy i/lub karcie produktu

Szczegółowe informacje można znaleźć w naszej <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Oświadczeniu gwarancyjnym