9L/lacZ

9L/lacZ-cellelinjen er en velkarakterisert gliosarkomcellelinje fra rotter som ofte brukes i nevrobiologisk og onkologisk forskning. Opprinnelig stammer denne cellelinjen fra en nitrosourea-indusert hjernesvulst hos rotter, og den har blitt modifisert til å uttrykke lacZ-genet, som koder for enzymet β-galaktosidase. Denne modifikasjonen gjør det lettere å spore og studere tumorceller in vivo, noe som er spesielt nyttig i eksperimenter som involverer tumorprogresjon og metastasering. Uttrykket av lacZ gjør det enkelt å identifisere disse cellene ved hjelp av X-gal-farging, som gjør at cellene blir blå når de uttrykker β-galaktosidase.

Disse cellene har en aggressiv evne til å danne svulster når de implanteres i immunsvekkede eller syngene verter, noe som gjør dem til en robust modell for å studere hjernekreftdynamikk og teste terapeutiske strategier mot gliomer. I tillegg har 9L/lacZ-cellelinjen blitt brukt i genterapiforsøk, særlig for å vurdere effekten av selvmordsgener og andre genetiske intervensjoner som tar sikte på å kontrollere tumorvekst. Denne cellelinjen er også sentral i forståelsen av samspillet mellom tumorceller og vertens immunsystem, og bidrar dermed til innsikt i kompleksiteten i tumorimmunologi.

37 °C, 5 %_CO2, befuktet atmosfære.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mykoplasma-kontaminering utelukkes ved hjelp av både PCR-baserte analyser og luminescensbaserte metoder for påvisning av mykoplasma.

For å sikre at det ikke finnes bakterie-, sopp- eller gjærkontaminering, blir cellekulturene inspisert visuelt hver dag.

For langtidsoppbevaring plasseres hetteglassene i flytende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Lagring ved -80 °C er kun akseptabelt som et kort mellomtrinn før overføring til flytende nitrogen.

Kryopreserverte cellelinjer sendes på tørris i validert, isolert emballasje med tilstrekkelig kjølemiddel til å opprettholde en temperatur på ca. -78 °C under hele transporten. Ved mottak skal beholderen inspiseres umiddelbart, og hetteglassene skal straks overføres til egnet lagringsplass.

Hos Cytion står vi bak kvaliteten og levedyktigheten til produktene våre. Vi garanterer at cellene våre vil være levedyktige ved starten av dyrkingen i 60 dager etter at de er sendt fra våre anlegg. Vi forsikrer at alle materialer er i samsvar med spesifikasjonene som er beskrevet i analysesertifikatet og/eller produktarket

For fullstendig informasjon, se vår <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantierklæring