L6

L6-cellelinjen er en veletablert modell avledet fra skjelettmuskelvev fra rotter. Disse cellene er kjent for sin evne til å differensiere til myotuber, noe som gjør dem til et verdifullt verktøy for studier av muskelutvikling, -regenerering og -fysiologi. L6-celler har en robust proliferativ kapasitet og brukes ofte i forskning som fokuserer på muskelcellebiologi, inkludert studier av muskelproteinsyntese, hypertrofi og atrofi. Differensieringsprosessen i L6-celler kan induseres under spesifikke dyrkingsforhold, noe som fører til dannelsen av flerkjernede myotuber som i stor grad etterligner egenskapene til modne skjelettmuskelfibre.

I tillegg til å kunne brukes i muskelfysiologisk forskning, brukes L6-celler også i metabolske studier, særlig studier som involverer glukoseopptak og insulinsignalveier. Disse cellene uttrykker insulinreseptorer og kan brukes til å undersøke de molekylære mekanismene som ligger til grunn for insulinresistens og diabetes. L6-cellelinjens respons på ulike metabolske stimuli gjør den til en ideell modell for å utforske effekten av ulike behandlinger eller genetiske modifikasjoner på muskelmetabolismen. Alt i alt er L6-celler en allsidig og pålitelig plattform for å øke vår forståelse av muskelbiologi og metabolske sykdommer.

37 °C, 5 %_CO2, befuktet atmosfære.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mykoplasma-kontaminering utelukkes ved hjelp av både PCR-baserte analyser og luminescensbaserte metoder for påvisning av mykoplasma.

For å sikre at det ikke finnes bakterie-, sopp- eller gjærkontaminering, blir cellekulturene inspisert visuelt hver dag.

For langtidsoppbevaring plasseres hetteglassene i flytende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Lagring ved -80 °C er kun akseptabelt som et kort mellomtrinn før overføring til flytende nitrogen.

Kryopreserverte cellelinjer sendes på tørris i validert, isolert emballasje med tilstrekkelig kjølemiddel til å opprettholde en temperatur på ca. -78 °C under hele transporten. Ved mottak skal beholderen inspiseres umiddelbart, og hetteglassene skal straks overføres til egnet lagringsplass.

Hos Cytion står vi bak kvaliteten og levedyktigheten til produktene våre. Vi garanterer at cellene våre vil være levedyktige ved starten av dyrkingen i 60 dager etter at de er sendt fra våre anlegg. Vi forsikrer at alle materialer er i samsvar med spesifikasjonene som er beskrevet i analysesertifikatet og/eller produktarket

For fullstendig informasjon, se vår <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantierklæring