H9c2(2-1)

H9c2(2-1)-celler, som stammer fra ventrikulære myoblaster fra embryonale BD1X-rottehjerter, er en subklon av den opprinnelige H9-cellelinjen som ble etablert på begynnelsen av 1990-tallet. Disse cellene er udødeliggjorte myoblaster som ofte brukes in vitro for å studere hjertets metabolisme, fysiologi og patofysiologi, inkludert myokardiskemi, hypertrofi og apoptosemekanismer.

Fenotypisk sett har H9c2-celler skjelettmuskelkarakteristika, men de beholder evnen til å anta en hjertemuskelfenotype under spesifikke eksperimentelle forhold, som for eksempel differensiering indusert av retinsyre eller andre stoffer. Denne fleksibiliteten gjør dem til en verdifull modell for å undersøke hjertemuskulaturens atferd som respons på ulike fysiologiske og farmakologiske stimuli. Genetisk sett er H9c2-celler diploide, noe som gjør det lettere å bruke dem i genetiske studier, der det er avgjørende å opprettholde en stabil karyotype.

Forskning på H9c2(2-1)-celler har bidratt betydelig til å forstå cellers respons på oksidativt stress, mitokondriell dysfunksjon og ulike farmakologiske stoffers beskyttende rolle mot kardiotoksisitet. Denne cellelinjen er fortsatt en hjørnestein i kardiomyocyttrelatert forskning, og den tilbyr en reproduserbar, kontrollert modell for å belyse de komplekse biologiske og molekylære mekanismene som ligger til grunn for hjertefunksjon og hjertesykdommer.

37 °C, 5 %_CO2, befuktet atmosfære.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mykoplasma-kontaminering utelukkes ved hjelp av både PCR-baserte analyser og luminescensbaserte metoder for påvisning av mykoplasma.

For å sikre at det ikke finnes bakterie-, sopp- eller gjærkontaminering, blir cellekulturene inspisert visuelt hver dag.

For langtidsoppbevaring plasseres hetteglassene i flytende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Lagring ved -80 °C er kun akseptabelt som et kort mellomtrinn før overføring til flytende nitrogen.

Kryopreserverte cellelinjer sendes på tørris i validert, isolert emballasje med tilstrekkelig kjølemiddel til å opprettholde en temperatur på ca. -78 °C under hele transporten. Ved mottak skal beholderen inspiseres umiddelbart, og hetteglassene skal straks overføres til egnet lagringsplass.

Hos Cytion står vi bak kvaliteten og levedyktigheten til produktene våre. Vi garanterer at cellene våre vil være levedyktige ved starten av dyrkingen i 60 dager etter at de er sendt fra våre anlegg. Vi forsikrer at alle materialer er i samsvar med spesifikasjonene som er beskrevet i analysesertifikatet og/eller produktarket

For fullstendig informasjon, se vår <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantierklæring