H9c2(2-1)

H9c2(2-1)-celler, der stammer fra ventrikulære myoblaster fra embryonale BD1X-rottehjerter, er en subklon af den oprindelige H9-cellelinje, der blev etableret i begyndelsen af 1990'erne. Disse celler er udødelige myoblaster, som ofte bruges in vitro til at studere hjertets metabolisme, fysiologi og patofysiologi, herunder myokardieiskæmi, hypertrofi og apoptosemekanismer.

Fænotypisk udviser H9c2-celler karakteristika for skeletmuskler, men bevarer evnen til at antage en hjertemuskelfænotype under specifikke eksperimentelle forhold, såsom differentiering induceret af retinsyre eller andre midler. Denne fleksibilitet gør dem til en værdifuld model til undersøgelse af hjertemusklers adfærd som reaktion på forskellige fysiologiske og farmakologiske stimuli. Genetisk set er H9c2-celler diploide, hvilket gør det lettere at bruge dem i genetiske studier, hvor det er afgørende at opretholde en stabil karyotype.

Forskning med H9c2(2-1)-celler har bidraget væsentligt til forståelsen af cellulære reaktioner på oxidativ stress, mitokondriel dysfunktion og forskellige farmakologiske midlers beskyttende rolle mod kardiotoksicitet. Denne cellelinje er fortsat en hjørnesten i kardiomyocyt-relateret forskning og tilbyder en reproducerbar, kontrolleret model til at belyse de komplekse biologiske og molekylære mekanismer, der ligger til grund for hjertefunktion og sygdomme.

37°C, 5%_CO2, befugtet atmosfære.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mycoplasma-kontaminering udelukkes ved hjælp af både PCR-baserede assays og luminescensbaserede mycoplasma-detektionsmetoder.

For at sikre, at der ikke er nogen bakterie-, svampe- eller gærforurening, underkastes cellekulturerne daglige visuelle inspektioner.

For langtidsopbevaring anbringes hætteglas i flydende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Opbevaring ved -80 °C er kun acceptabelt som et kort mellemtrin før overførsel til flydende nitrogen.

Kryopræserverede cellelinjer sendes på tøris i valideret, isoleret emballage med tilstrækkeligt kølemiddel til at opretholde ca. -78 °C under hele transporten. Ved modtagelse skal beholderen straks inspiceres, og hætteglassene skal straks overføres til passende opbevaring.

Hos Cytion står vi inde for vores produkters kvalitet og levedygtighed. Vi garanterer, at vores celler vil være levedygtige ved kulturens start i 60 dage efter afsendelse fra vores faciliteter. Vi sikrer, at alle materialer er i overensstemmelse med de specifikationer, der er beskrevet i analysecertifikatet og/eller produktarket

For alle detaljer henvises til vores <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantierklæring