CT26.CL25

Die CT26.CL25-Zelllinie ist ein murines Kolonkarzinom-Modell, das von der elterlichen CT26-Zelllinie abgeleitet ist, einem chemisch induzierten, undifferenzierten Kolonkarzinom, das von BALB/c-Mäusen stammt. CT26.CL25 wurde genetisch so verändert, dass es das Protein β-Galaktosidase (β-gal) exprimiert, was es zu einem hervorragenden Modell für die Untersuchung der Tumorimmunologie und -immuntherapie macht, insbesondere im Zusammenhang mit tumorassoziierten Antigenen (TAAs). Diese Modifikation ermöglicht spezifische immunologische Studien, die auf β-gal als Neoantigen abzielen, was die Erforschung der Mechanismen der Immunumgehung von Tumoren und die Entwicklung von Krebsimpfstoffen oder adoptiven Zelltherapien erleichtert.

CT26.CL25 wurde in präklinischen Modellen eingesetzt, um Immunreaktionen und die Wirksamkeit von Immuntherapien zu untersuchen, z. B. die Verwendung von dendritischen Zellen (DCs), die mit tumorassoziierten Antigenen beladen sind. Studien haben gezeigt, dass Immunisierungsstrategien, bei denen DCs mit Peptiden gepulst werden, die von retroviralen Antigenen wie gp70 abgeleitet sind, robuste Anti-Tumor-Immunantworten hervorrufen können. In experimentellen Modellen wurde die Aktivierung von CD8+ zytotoxischen T-Lymphozyten (CTLs), die spezifisch für gp70 sind, beobachtet, was die Nützlichkeit der Zelllinie bei der Prüfung immuntherapeutischer Ansätze belegt. Die Immunisierung mit solchen peptidbeladenen DCs zeigte jedoch Grenzen auf, insbesondere bei der Behandlung etablierter Metastasen, was die Herausforderungen bei der Umsetzung von prophylaktischen Immunantworten in therapeutische Wirksamkeit verdeutlicht.

Darüber hinaus wird CT26.CL25 in der Forschung häufig verwendet, um die Wirksamkeit kombinierter Immuntherapieansätze zu testen, wie z. B. die Verwendung von Immun-Checkpoint-Inhibitoren oder Krebsimpfstoffen. In Studien wurden beispielsweise die Auswirkungen einer metronomischen Chemotherapie in Kombination mit Immun-Checkpoint-Inhibitoren untersucht, wobei die Induktion des immunogenen Zelltods (ICD) in CT26.CL25 für die Verstärkung der Anti-Tumor-Immunantwort entscheidend war. Diese Untersuchungen haben gezeigt, dass die gezielte Beeinflussung von Immun-Checkpoints in Kombination mit einer Chemotherapie die Abstoßungsraten des Tumors erhöhen und ein langfristiges immunologisches Gedächtnis aufbauen kann.

37°C, 5%_CO2, befeuchtete Atmosphäre.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Eine Kontamination mit Mykoplasmen wird sowohl durch PCR-basierte Assays als auch durch lumineszenzbasierte Mykoplasmen-Nachweisverfahren ausgeschlossen.

Um sicherzustellen, dass keine Kontamination mit Bakterien, Pilzen oder Hefen vorliegt, werden die Zellkulturen täglich visuell überprüft.

Zur Langzeitkonservierung werden die Fläschchen in flüssigem Stickstoff bei etwa -150 bis -196 °C gelagert. Eine Lagerung bei -80 °C ist nur als kurzer Zwischenschritt vor der Überführung in flüssigen Stickstoff akzeptabel.

Kryokonservierte Zelllinien werden auf Trockeneis in einer validierten, isolierten Verpackung mit ausreichend Kühlmittel versandt, um während des gesamten Transports eine Temperatur von etwa -78 °C aufrechtzuerhalten. Prüfen Sie den Behälter bei Erhalt sofort und bringen Sie die Fläschchen unverzüglich in ein geeignetes Lager.

Bei Cytion stehen wir hinter der Qualität und Lebensfähigkeit unserer Produkte. Wir garantieren, dass unsere Zellen zu Beginn der Kultur für 60 Tage nach dem Versand aus unseren Einrichtungen lebensfähig sind. Wir versichern, dass alle Materialien mit den im Analysezertifikat und/oder Produktblatt beschriebenen Spezifikationen übereinstimmen

Ausführliche Informationen finden Sie in unserer <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantieerklärung