DSL-6A-C1

DSL-6A/C1-cellelinjen er en duktal cellelinje fra bukspyttkjertelen som opprinnelig stammer fra det transplanterbare acinarcellekarsinomet DSL-6, en svulst som ble etablert fra et primært acinarcellekarsinom i bukspyttkjertelen hos en hannrotte av rasen Lewis. Denne rotten ble eksponert for azaserin intraperitonealt, noe som førte til utvikling av svulsten. Ved etablering i kultur beholdt DSL-6A/C1-cellene evnen til å produsere amylase, et karakteristisk eksokrint enzym for acinære celler. Denne produksjonen opphørte imidlertid etter én til to ukers dyrking.

Etter hvert som DSL-6A/C1-cellene ble holdt i kultur og utsatt for regraftingseksperimenter, gjennomgikk de en betydelig fenotypisk forandring. Cellene mistet strukturelle og immunhistokjemiske markører som er typiske for acinære celler, og begynte i stedet å uttrykke markører som tyder på en duktal cellefenotype. En av de viktigste markørene som ble tilegnet under denne transformasjonen, er cystisk fibrose transmembranregulator (CFTR), som vanligvis forbindes med duktale celler i bukspyttkjertelen. Dette skiftet i markøruttrykk tyder på en betydelig plastisitet i cellelinjen, noe som gjenspeiler endringer i celleidentitet og -funksjon som kan oppstå som respons på in vitro-miljøet.

37 °C, 5 %_CO2, befuktet atmosfære.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mykoplasma-kontaminering utelukkes ved hjelp av både PCR-baserte analyser og luminescensbaserte metoder for påvisning av mykoplasma.

For å sikre at det ikke finnes bakterie-, sopp- eller gjærkontaminering, blir cellekulturene inspisert visuelt hver dag.

For langtidsoppbevaring plasseres hetteglassene i flytende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Lagring ved -80 °C er kun akseptabelt som et kort mellomtrinn før overføring til flytende nitrogen.

Kryopreserverte cellelinjer sendes på tørris i validert, isolert emballasje med tilstrekkelig kjølemiddel til å opprettholde en temperatur på ca. -78 °C under hele transporten. Ved mottak skal beholderen inspiseres umiddelbart, og hetteglassene skal straks overføres til egnet lagringsplass.

Hos Cytion står vi bak kvaliteten og levedyktigheten til produktene våre. Vi garanterer at cellene våre vil være levedyktige ved starten av dyrkingen i 60 dager etter at de er sendt fra våre anlegg. Vi forsikrer at alle materialer er i samsvar med spesifikasjonene som er beskrevet i analysesertifikatet og/eller produktarket

For fullstendig informasjon, se vår <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantierklæring