DSL-6A-C1

A linha celular DSL-6A/C1 é uma linha celular ductal pancreática originalmente derivada do carcinoma de células acinares transplantáveis DSL-6, um tumor estabelecido a partir de um carcinoma primário de células acinares do pâncreas num rato Lewis macho. Este rato foi exposto à azaserina por via intraperitoneal, o que levou ao desenvolvimento do tumor. Inicialmente, após o estabelecimento em cultura, as células DSL-6A/C1 mantiveram a capacidade de produzir amilase, uma enzima exócrina caraterística das células acinares. No entanto, esta produção cessou ao fim de uma a duas semanas de cultura.

Com o passar do tempo, à medida que as células DSL-6A/C1 eram mantidas em cultura e submetidas a experiências de reenxerto, sofreram uma notável transformação fenotípica. As células perderam marcadores estruturais e imunohistoquímicos típicos das células acinares e, em vez disso, começaram a expressar marcadores indicativos do fenótipo de células ductais. Um dos principais marcadores adquiridos durante esta transformação é o regulador transmembranar da fibrose cística (CFTR), que está normalmente associado às células ductais do pâncreas. Esta mudança na expressão dos marcadores sugere uma plasticidade significativa na linha celular, reflectindo alterações na identidade e função das células que podem ocorrer em resposta ao ambiente in vitro.

37°C, 5%_CO2, atmosfera humidificada.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

A contaminação por micoplasma é excluída utilizando ensaios baseados em PCR e métodos de deteção de micoplasma baseados em luminescência.

Para garantir que não há contaminação bacteriana, fúngica ou de leveduras, as culturas de células são sujeitas a inspecções visuais diárias.

Para conservação a longo prazo, colocar os frascos em azoto líquido em fase de vapor a uma temperatura entre -150 e -196 °C. O armazenamento a -80 °C é aceitável apenas como um curto passo intermédio antes da transferência para azoto líquido.

As linhas celulares criopreservadas são expedidas em gelo seco em embalagens validadas e isoladas com refrigerante suficiente para manter aproximadamente -78 °C durante o transporte. Aquando da receção, inspecionar imediatamente o recipiente e transferir sem demora os frascos para um local de armazenamento adequado.

Na Cytion, nós garantimos a qualidade e a viabilidade de nossos produtos. Garantimos que nossas células serão viáveis no início da cultura por 60 dias após o envio de nossas instalações. Asseguramos que todos os materiais estão em conformidade com as especificações descritas no Certificado de Análise e/ou Folha de Produto

Para mais informações, consulte a nossa <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Declaração de Garantia