DI TNC1

Die DI TNC1-Zelllinie ist ein immortalisiertes Astrozytenmodell, das von primären Typ-1-Astrozyten aus dem Zwischenhirn einer neugeborenen Ratte stammt. Die Zellen wurden mit Hilfe des mittleren T-Antigens des Polyomavirus immortalisiert, was ihnen die Fähigkeit verleiht, sich unbegrenzt zu vermehren und gleichzeitig mehrere Eigenschaften der primären Astrozyten zu erhalten. DI TNC1-Zellen werden häufig in Studien zu Neuroinflammation und Neuroprotektion verwendet, insbesondere zur Untersuchung des astrozytären Energiestoffwechsels, der Reaktion auf oxidativen Stress und der Regulierung von Entzündungsprozessen. Diese Zellen exprimieren wichtige astrozytäre Marker wie das glial fibrillary acidic protein (GFAP) und das S100β-Protein und sind an Stoffwechselprozessen beteiligt, einschließlich der Glykogenspeicherung und der Energieversorgung von Neuronen.

Eines der charakteristischen Merkmale der DI TNC1-Astrozyten ist ihre Beteiligung an Studien zum Energiestoffwechsel. Die Forschung hat gezeigt, dass diese Zellen auf verschiedene Neurotransmitter wie Noradrenalin und vasoaktives intestinales Peptid (VIP) reagieren, indem sie Glykogenolyse betreiben und den Gehalt an zyklischem AMP (cAMP) modulieren. Darüber hinaus wurde gezeigt, dass DI TNC1-Zellen Glukose verwerten und Laktat produzieren, was für die Unterstützung neuronaler Funktionen entscheidend ist. Bestimmte Reaktionen, die in primären Astrozyten zu beobachten sind, wie z. B. die durch Glutamat stimulierte Glykolyse oder eine signifikante Langzeit-Glykogen-Resynthese, sind in DI TNC1-Zellen jedoch nicht so robust. Dies unterstreicht den Nutzen von DI TNC1-Zellen bei der Untersuchung spezifischer Aspekte der Astrozytenphysiologie, die für die Energiedynamik im zentralen Nervensystem relevant sind.

Ein weiterer wichtiger Bereich für Studien mit DI TNC1-Zellen ist die Untersuchung von oxidativem Stress und Entzündungssignalwegen. Beispielsweise wurden DI TNC1-Zellen zur Analyse der Regulierung des Kernfaktors kappa-light-chain-enhancer of activated B cells (NF-κB) und des Kernfaktors erythroid 2-related factor 2 (Nrf2) verwendet. Experimente mit pflanzlichen Polyphenolen wie Quercetin und Extrakten aus Pflanzen wie Ashwagandha haben gezeigt, dass diese Verbindungen die NF-κB- und Nrf2/ARE-Signalwege (Antioxidant Response Element) in DI TNC1-Astrozyten modulieren können. Insbesondere wurde festgestellt, dass Quercetin die durch Lipopolysaccharid (LPS) ausgelöste NF-κB-Aktivität hemmt und die Nrf2-vermittelte antioxidative Abwehr stärkt, was das Potenzial dieser Zellen für das Screening von entzündungshemmenden und neuroprotektiven Wirkstoffen verdeutlicht.

37°C, 5%_CO2, befeuchtete Atmosphäre.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Eine Kontamination mit Mykoplasmen wird sowohl durch PCR-basierte Assays als auch durch lumineszenzbasierte Mykoplasmen-Nachweisverfahren ausgeschlossen.

Um sicherzustellen, dass keine Kontamination mit Bakterien, Pilzen oder Hefen vorliegt, werden die Zellkulturen täglich visuell überprüft.

Zur Langzeitkonservierung werden die Fläschchen in flüssigem Stickstoff bei etwa -150 bis -196 °C gelagert. Eine Lagerung bei -80 °C ist nur als kurzer Zwischenschritt vor der Überführung in flüssigen Stickstoff akzeptabel.

Kryokonservierte Zelllinien werden auf Trockeneis in einer validierten, isolierten Verpackung mit ausreichend Kühlmittel versandt, um während des gesamten Transports eine Temperatur von etwa -78 °C aufrechtzuerhalten. Prüfen Sie den Behälter bei Erhalt sofort und bringen Sie die Fläschchen unverzüglich in ein geeignetes Lager.

Bei Cytion stehen wir hinter der Qualität und Lebensfähigkeit unserer Produkte. Wir garantieren, dass unsere Zellen zu Beginn der Kultur für 60 Tage nach dem Versand aus unseren Einrichtungen lebensfähig sind. Wir versichern, dass alle Materialien mit den im Analysezertifikat und/oder Produktblatt beschriebenen Spezifikationen übereinstimmen

Ausführliche Informationen finden Sie in unserer <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantieerklärung