HS-5

Die Zelllinie HS-5 ist ein aus menschlichem Knochenmark gewonnener Modellstamm mesenchymaler Stromazellen (MSC), der häufig zur Untersuchung der unterstützenden Rolle von Stromazellen bei der Hämatopoese und der Krebsentstehung verwendet wird. Die HS-5-Zellen, die ursprünglich isoliert und mittels der Gene E6 und E7 des humanen Papillomavirus immortalisiert wurden, weisen eine fibroblastenähnliche Morphologie auf und sind dafür bekannt, eine Vielzahl von Zytokinen und Wachstumsfaktoren zu sekretieren, die für die Interaktionen zwischen hämatopoetischen und Immunzellen entscheidend sind. Zu den nennenswerten sekretierten Faktoren zählen unter anderem der Granulozyten-Kolonie-stimulierende Faktor (G-CSF), der Granulozyten-Makrophagen-Kolonie-stimulierende Faktor (GM-CSF), Makrophagen-CSF (M-CSF), Stammzellfaktor (SCF), Interleukin-6 (IL-6), IL-8 und IL-11. Diese Sekrete ermöglichen es den HS-5-Zellen, das Wachstum und die Proliferation hämatopoetischer Vorläuferzellen in vitro selbst unter serumfreien Bedingungen aufrechtzuerhalten, was ihre funktionelle Ähnlichkeit mit primären MSCs bei der Unterstützung der Hämatopoese unterstreicht.

In der onkologischen Forschung dienen HS-5-Zellen als Modell zur Untersuchung der Wechselwirkungen zwischen MSCs und Krebszellen, insbesondere bei der Erforschung des durch die Tumormikroumgebung vermittelten Überlebens von Krebszellen, der Immunmodulation und der Arzneimittelresistenz. Studien haben gezeigt, dass HS-5-Zellen Zellen der akuten myeloischen Leukämie (AML) vor der durch Chemotherapeutika wie Cytarabin (Ara-C) und Daunomycin (DNR) induzierten Apoptose schützen können, möglicherweise über Mechanismen, die Zytokin-Signalwege und direkte Zell-Zell-Interaktionen beinhalten. Diese schützende Wirkung von HS-5-Zellen fördert die Proliferation von AML-Zellen und verringert die Wirksamkeit der Chemotherapie, was diese Zelllinie zu einem wertvollen Werkzeug für die Modellierung von Arzneimittelresistenzen in der Mikroumgebung des Knochenmarks macht. Darüber hinaus exprimieren HS-5-Zellen MSC-Marker wie CD73, CD90 und CD105, wobei ihre Expressionsniveaus im Vergleich zu primären MSCs variieren können.

Darüber hinaus wurden HS-5-Zellen zur Erforschung neuartiger therapeutischer Ansätze genutzt, beispielsweise zur Untersuchung der zytotoxischen Wirkungen von Nanomaterialien wie reinem Graphen. Es wurde gezeigt, dass die Exposition von HS-5-Zellen gegenüber Graphen eine mitochondriale Dysfunktion und oxidativen Stress induziert, was über eine erhöhte Produktion reaktiver Sauerstoffspezies (ROS) und ein gestörtes mitochondriales Membranpotential zur Apoptose führt; damit dienen sie als Modell zur Bewertung der Toxizität von Nanopartikeln und ihres therapeutischen Potenzials bei Interaktionen mit Stromazellen innerhalb der Tumormikroumgebung.

37°C, 5%_CO2, befeuchtete Atmosphäre.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Eine Kontamination mit Mykoplasmen wird sowohl durch PCR-basierte Assays als auch durch lumineszenzbasierte Mykoplasmen-Nachweisverfahren ausgeschlossen.

Um sicherzustellen, dass keine Kontamination mit Bakterien, Pilzen oder Hefen vorliegt, werden die Zellkulturen täglich visuell überprüft.

Zur Langzeitkonservierung werden die Fläschchen in flüssigem Stickstoff bei etwa -150 bis -196 °C gelagert. Eine Lagerung bei -80 °C ist nur als kurzer Zwischenschritt vor der Überführung in flüssigen Stickstoff akzeptabel.

Kryokonservierte Zelllinien werden auf Trockeneis in einer validierten, isolierten Verpackung mit ausreichend Kühlmittel versandt, um während des gesamten Transports eine Temperatur von etwa -78 °C aufrechtzuerhalten. Prüfen Sie den Behälter bei Erhalt sofort und bringen Sie die Fläschchen unverzüglich in ein geeignetes Lager.

Bei Cytion stehen wir hinter der Qualität und Lebensfähigkeit unserer Produkte. Wir garantieren, dass unsere Zellen zu Beginn der Kultur für 60 Tage nach dem Versand aus unseren Einrichtungen lebensfähig sind. Wir versichern, dass alle Materialien mit den im Analysezertifikat und/oder Produktblatt beschriebenen Spezifikationen übereinstimmen

Ausführliche Informationen finden Sie in unserer <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantieerklärung