F9

F9-cellelinjen, en embryonal karsinommodell avledet fra et testikulært teratom fra C57BL/6-mus, er et viktig verktøy innen utviklingsbiologi og embryologi. F9-celler er i stand til å differensiere til parietal endoderm når de utsettes for retinsyre og dibutyrylsyklisk AMP (cAMP). Denne differensieringen kjennetegnes av betydelige endringer i celleatferd og proteinuttrykk, inkludert syntese av plasminogenaktivator, laminin og type IV-kollagen. Disse proteinene er avgjørende for å forstå prosessene for vevsutvikling og matriksdannelse i tidlige embryonale stadier.

Det er verdt å merke seg at cAMPs evne til å indusere differensiering i F9-celler er betinget av forutgående behandling med retinsyre, noe som tyder på et komplekst samspill mellom disse signalmolekylene når det gjelder å trigge utviklingsveier. I tillegg er F9-celler kjennetegnet ved at de har tre kopier av beta 1-integringenet, som kan påvirke celleadhesjon og mobilitet, noe som ytterligere understreker deres anvendelighet i studier av celleinteraksjoner og sammensetningen av den ekstracellulære matriks. Sikkerhetsprofileringen av disse cellene omfatter testing for ectromelia-virus (musekopper), som de har vist seg å være negative for, noe som sikrer at de egner seg til et bredt spekter av eksperimentelle anvendelser uten risiko for viruskontaminering.

37 °C, 5 %_CO2, befuktet atmosfære.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mykoplasma-kontaminering utelukkes ved hjelp av både PCR-baserte analyser og luminescensbaserte metoder for påvisning av mykoplasma.

For å sikre at det ikke finnes bakterie-, sopp- eller gjærkontaminering, blir cellekulturene inspisert visuelt hver dag.

For langtidsoppbevaring plasseres hetteglassene i flytende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Lagring ved -80 °C er kun akseptabelt som et kort mellomtrinn før overføring til flytende nitrogen.

Kryopreserverte cellelinjer sendes på tørris i validert, isolert emballasje med tilstrekkelig kjølemiddel til å opprettholde en temperatur på ca. -78 °C under hele transporten. Ved mottak skal beholderen inspiseres umiddelbart, og hetteglassene skal straks overføres til egnet lagringsplass.

Hos Cytion står vi bak kvaliteten og levedyktigheten til produktene våre. Vi garanterer at cellene våre vil være levedyktige ved starten av dyrkingen i 60 dager etter at de er sendt fra våre anlegg. Vi forsikrer at alle materialer er i samsvar med spesifikasjonene som er beskrevet i analysesertifikatet og/eller produktarket

For fullstendig informasjon, se vår <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantierklæring