CTX TNA2

CTX TNA2 er en astrocytcellelinje fra rotter, som blev etableret fra primære kulturer af kortikale astrocytter. Den bruges ofte til at studere funktioner i centralnervesystemet (CNS), især i forhold til glialbiologi, neurotoksicitet og neurobeskyttelse. Astrocytter spiller en afgørende rolle i opretholdelsen af CNS-homeostase, giver strukturel og metabolisk støtte til neuroner og formidler reaktioner på skader og oxidativ stress.

I forskellige undersøgelser er CTX TNA2-celler blevet brugt til at modellere neurotoksicitet, især i forbindelse med excitotoksicitet induceret af stoffer som glutamat. For eksempel udløser eksponering for glutamat i CTX TNA2-celler apoptose og autofagi gennem mekanismer, der involverer reaktive oxygenarter (ROS) og glykogensyntase-kinase-3β (GSK-3β)-vejen. Disse veje er centrale for cellernes reaktion på oxidativ stress og mitokondriel dysfunktion, især efter traumatisk hjerneskade eller andre neurodegenerative tilstande. Derudover har neurobeskyttende midler som resveratrol og cannabidiol (CBD) vist sig at reducere ROS-generering og hæmme glutamat-induceret autofagi og apoptose i disse astrocytter.

CTX TNA2-cellelinjen har vist sig at være en værdifuld in vitro-model til at studere ikke kun grundlæggende astrocytfunktion, men også det terapeutiske potentiale i antioxidanter og neurobeskyttende forbindelser under forhold med CNS-skade og sygdom.

37°C, 5%_CO2, befugtet atmosfære.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mycoplasma-kontaminering udelukkes ved hjælp af både PCR-baserede assays og luminescensbaserede mycoplasma-detektionsmetoder.

For at sikre, at der ikke er nogen bakterie-, svampe- eller gærforurening, underkastes cellekulturerne daglige visuelle inspektioner.

For langtidsopbevaring anbringes hætteglas i flydende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Opbevaring ved -80 °C er kun acceptabelt som et kort mellemtrin før overførsel til flydende nitrogen.

Kryopræserverede cellelinjer sendes på tøris i valideret, isoleret emballage med tilstrækkeligt kølemiddel til at opretholde ca. -78 °C under hele transporten. Ved modtagelse skal beholderen straks inspiceres, og hætteglassene skal straks overføres til passende opbevaring.

Hos Cytion står vi inde for vores produkters kvalitet og levedygtighed. Vi garanterer, at vores celler vil være levedygtige ved kulturens start i 60 dage efter afsendelse fra vores faciliteter. Vi sikrer, at alle materialer er i overensstemmelse med de specifikationer, der er beskrevet i analysecertifikatet og/eller produktarket

For alle detaljer henvises til vores <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantierklæring