CTX TNA2

CTX TNA2 er en astrocyttcellelinje fra rotter som ble etablert fra primærkulturer av kortikale astrocytter. Den brukes ofte til å studere funksjoner i sentralnervesystemet (CNS), særlig i forbindelse med gliabiologi, nevrotoksisitet og nevrobeskyttelse. Astrocytter spiller en avgjørende rolle i opprettholdelsen av homeostase i CNS, ved å gi strukturell og metabolsk støtte til nevroner og ved å formidle responser på skader og oksidativt stress.

I flere studier har CTX TNA2-celler blitt brukt til å modellere nevrotoksisitet, spesielt når det gjelder eksitotoksisitet indusert av stoffer som glutamat. For eksempel utløser eksponering for glutamat i CTX TNA2-celler apoptose og autofagi gjennom mekanismer som involverer reaktive oksygenarter (ROS) og glykogensyntase kinase-3β (GSK-3β). Disse signalveiene er sentrale i cellenes respons på oksidativt stress og mitokondriell dysfunksjon, særlig etter traumatisk hjerneskade eller andre nevrodegenerative tilstander. I tillegg har nevrobeskyttende midler som resveratrol og cannabidiol (CBD) vist seg å redusere ROS-generering og hemme glutamatindusert autofagi og apoptose i disse astrocyttene.

CTX TNA2-cellelinjen har vist seg å være en verdifull in vitro-modell for å studere ikke bare astrocyttenes grunnleggende funksjon, men også det terapeutiske potensialet til antioksidanter og nevrobeskyttende stoffer i forbindelse med skader og sykdommer i sentralnervesystemet.

37 °C, 5 %_CO2, befuktet atmosfære.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mykoplasma-kontaminering utelukkes ved hjelp av både PCR-baserte analyser og luminescensbaserte metoder for påvisning av mykoplasma.

For å sikre at det ikke finnes bakterie-, sopp- eller gjærkontaminering, blir cellekulturene inspisert visuelt hver dag.

For langtidsoppbevaring plasseres hetteglassene i flytende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Lagring ved -80 °C er kun akseptabelt som et kort mellomtrinn før overføring til flytende nitrogen.

Kryopreserverte cellelinjer sendes på tørris i validert, isolert emballasje med tilstrekkelig kjølemiddel til å opprettholde en temperatur på ca. -78 °C under hele transporten. Ved mottak skal beholderen inspiseres umiddelbart, og hetteglassene skal straks overføres til egnet lagringsplass.

Hos Cytion står vi bak kvaliteten og levedyktigheten til produktene våre. Vi garanterer at cellene våre vil være levedyktige ved starten av dyrkingen i 60 dager etter at de er sendt fra våre anlegg. Vi forsikrer at alle materialer er i samsvar med spesifikasjonene som er beskrevet i analysesertifikatet og/eller produktarket

For fullstendig informasjon, se vår <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantierklæring