Human Gingival Fibroblasts (hGF)

Humane gingivale fibroblaster (hGF) er primære celler, der stammer fra bindevævet i gingiva eller tandkødet i mundhulen. Disse fibroblaster spiller en afgørende rolle i opretholdelsen af tandkødsvævets strukturelle integritet ved at producere ekstracellulære matrixkomponenter, herunder kollagen, elastin og glykosaminoglykaner. Deres evne til at sprede sig og migrere er afgørende for sårheling, vævsreparation og reaktionen på parodontale sygdomme. Ud over deres strukturelle roller er hGF involveret i inflammatoriske reaktioner i gingiva, hvor de interagerer med forskellige immunceller og medierer frigivelsen af cytokiner og vækstfaktorer. Det gør dem til en vigtig cellulær model for studier af oral sundhed, parodontal sygdom og vævsregenerering.

hGF-celler bruges i vid udstrækning i forskning med fokus på oral biologi, især til at forstå patofysiologien ved parodontale sygdomme, hvor samspillet mellem fibroblaster og patogene bakterier som *Porphyromonas gingivalis* er af stor interesse. Disse celler bruges også inden for vævsteknik og regenerativ medicin, især til at udvikle behandlinger af tandkøds- og parodontale defekter. Deres reaktion på forskellige biomaterialer, vækstfaktorer og ekstracellulære matrixkomponenter undersøges ofte for at optimere betingelserne for vævsreparation og -regenerering inden for oral kirurgi og tandimplantater.

37°C, 5%_CO2, befugtet atmosfære.

Post-thaw viability ≥ 70 % viable cells. More than 80 % confluence within the expected recovery period.

1. Thaw the cryovial quickly in a 37 °C water bath, swirling gently. Just before the last ice has melted, move the vial to a laminar flow hood and decontaminate its outer surface.

2. Transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube, add 10 ml of Fibroblast Growth Medium and centrifuge at 250 × g for 5 minutes.

3. Remove the supernatant and resuspend the cell pellet in 10 ml of Fibroblast Growth Medium. Check cell number and viability.

4. Divide the suspension between two 25 cm² culture flasks (5 ml each). Using two flasks reduces the risk of losing all cells if a passage fails.

5. Incubate at 37 °C, 5 % CO₂ and saturated humidity, with the screw caps opened by half a turn for gas exchange.

6. Change the medium after 24 hours to remove unattached cells, then every 48 to 72 hours, using pre-warmed medium only.

7. Subculture the cells at about 75 % confluence. Denser cultures undergo irreversible contact inhibition and stop proliferating. Use the subculture reagents recommended on the certificate of analysis.

8. Recommended seeding density: more than 4,000 cells/cm².

Mycoplasma-kontaminering udelukkes ved hjælp af både PCR-baserede assays og luminescensbaserede mycoplasma-detektionsmetoder.

For at sikre, at der ikke er nogen bakterie-, svampe- eller gærforurening, underkastes cellekulturerne daglige visuelle inspektioner.

For langtidsopbevaring anbringes hætteglas i flydende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Opbevaring ved -80 °C er kun acceptabelt som et kort mellemtrin før overførsel til flydende nitrogen.

Kryopræserverede cellelinjer sendes på tøris i valideret, isoleret emballage med tilstrækkeligt kølemiddel til at opretholde ca. -78 °C under hele transporten. Ved modtagelse skal beholderen straks inspiceres, og hætteglassene skal straks overføres til passende opbevaring.

Hos Cytion står vi inde for vores produkters kvalitet og levedygtighed. Vi garanterer, at vores celler vil være levedygtige ved kulturens start i 60 dage efter afsendelse fra vores faciliteter. Vi sikrer, at alle materialer er i overensstemmelse med de specifikationer, der er beskrevet i analysecertifikatet og/eller produktarket

For alle detaljer henvises til vores <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantierklæring