Human Gingival Fibroblasts (hGF)

Humane gingivale fibroblaster (hGF) er primære celler som stammer fra bindevevet i gingiva, eller tannkjøttvevet, i munnhulen. Disse fibroblastene spiller en viktig rolle i opprettholdelsen av tannkjøttvevets strukturelle integritet ved å produsere ekstracellulære matrikskomponenter, inkludert kollagen, elastin og glykosaminoglykaner. Deres evne til å proliferere og migrere er avgjørende for sårtilheling, vevsreparasjon og responsen på periodontal sykdom. I tillegg til sine strukturelle roller er hGF involvert i betennelsesreaksjoner i gingiva, hvor de interagerer med ulike immunceller og medierer frigjøringen av cytokiner og vekstfaktorer. Dette gjør dem til en viktig cellulær modell for studier av oral helse, periodontal sykdom og vevsregenerering.

hGF-celler er mye brukt i forskning som fokuserer på oral biologi, særlig for å forstå patofysiologien ved periodontale sykdommer, der interaksjonen mellom fibroblaster og patogene bakterier som *Porphyromonas gingivalis* er av stor interesse. Disse cellene brukes også i vevsteknikk og regenerativ medisin, spesielt i utviklingen av behandlinger for gingivale og periodontale defekter. Cellenes respons på ulike biomaterialer, vekstfaktorer og ekstracellulære matrikskomponenter blir ofte studert for å optimalisere forholdene for vevsreparasjon og -regenerering ved oral kirurgi og tannimplantater.

37 °C, 5 %_CO2, befuktet atmosfære.

Post-thaw viability ≥ 70 % viable cells. More than 80 % confluence within the expected recovery period.

1. Thaw the cryovial quickly in a 37 °C water bath, swirling gently. Just before the last ice has melted, move the vial to a laminar flow hood and decontaminate its outer surface.

2. Transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube, add 10 ml of Fibroblast Growth Medium and centrifuge at 250 × g for 5 minutes.

3. Remove the supernatant and resuspend the cell pellet in 10 ml of Fibroblast Growth Medium. Check cell number and viability.

4. Divide the suspension between two 25 cm² culture flasks (5 ml each). Using two flasks reduces the risk of losing all cells if a passage fails.

5. Incubate at 37 °C, 5 % CO₂ and saturated humidity, with the screw caps opened by half a turn for gas exchange.

6. Change the medium after 24 hours to remove unattached cells, then every 48 to 72 hours, using pre-warmed medium only.

7. Subculture the cells at about 75 % confluence. Denser cultures undergo irreversible contact inhibition and stop proliferating. Use the subculture reagents recommended on the certificate of analysis.

8. Recommended seeding density: more than 4,000 cells/cm².

Mykoplasma-kontaminering utelukkes ved hjelp av både PCR-baserte analyser og luminescensbaserte metoder for påvisning av mykoplasma.

For å sikre at det ikke finnes bakterie-, sopp- eller gjærkontaminering, blir cellekulturene inspisert visuelt hver dag.

For langtidsoppbevaring plasseres hetteglassene i flytende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Lagring ved -80 °C er kun akseptabelt som et kort mellomtrinn før overføring til flytende nitrogen.

Kryopreserverte cellelinjer sendes på tørris i validert, isolert emballasje med tilstrekkelig kjølemiddel til å opprettholde en temperatur på ca. -78 °C under hele transporten. Ved mottak skal beholderen inspiseres umiddelbart, og hetteglassene skal straks overføres til egnet lagringsplass.

Hos Cytion står vi bak kvaliteten og levedyktigheten til produktene våre. Vi garanterer at cellene våre vil være levedyktige ved starten av dyrkingen i 60 dager etter at de er sendt fra våre anlegg. Vi forsikrer at alle materialer er i samsvar med spesifikasjonene som er beskrevet i analysesertifikatet og/eller produktarket

For fullstendig informasjon, se vår <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantierklæring