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C6
Tissu
Cerveau
Maladie
Gliome
Synonymes
C-6, C 6, RGC-6, RGC6, RGc6

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C6

Cell line · Référence du produit 500142

The C6 cell line maintains glial cell type with fibroblast morphology and originates from a glioma of a Wisthar-Furth rat. The glioma was induced by expos...

€430.00hors taxes et frais de port

Personnalisation / Recommandations

En stock
Lot
Recommandé (lot le plus récent)
1

01Informations générales

Description

La lignée cellulaire C6 conserve le type de cellule gliale avec une morphologie de fibroblaste et provient d'un gliome d'un rat de Wisthar-Furth. Le gliome a été induit par l'exposition à la N-nitrosométhylurée, après de nombreux cycles de culture et de passages alternés chez l'animal.

La lignée cellulaire de gliome C6 est fréquemment utilisée dans la recherche en neuro-oncologie pour créer des modèles animaux qui reproduisent fidèlement les caractéristiques du gliome humain, contribuant ainsi au développement de nouveaux agents et stratégies thérapeutiques. Elle est particulièrement efficace pour la culture cellulaire en 3D et le criblage à haut débit.

Les cellules C6 sont génétiquement diverses : elles possèdent un gène p53 de type sauvage, une expression accrue du gène Rb et un locus p16/Cdkn2a/Ink4a mutant, mais l'expression de l'ARNm de p16 et de p19ARF leur fait défaut. Ils surexpriment également plusieurs gènes dans les gliomes humains, tels que le PDGFβ, l'IGF-1, l'EGFR et les protéines précurseurs Erb3/Her3.

Cependant, l'expression de l'IGF-2, du FGF-9 et du FGF-10 est réduite, tandis que l'expression du gène de la MMP-7 reste inchangée. Comme les gliomes humains, les cellules C6 présentent une activité accrue des gènes de la voie Ras, qui est régulée par l'expression élevée de la protéine activatrice de la guanine triphosphate Ras.

La lignée cellulaire C6 a été utilisée dans diverses études. Par exemple, elle a été utilisée pour examiner la capacité du 2-(2,4-dihydroxy phényl)thieno-1,3-thiazin-4-one (BChTT) à stopper la prolifération des cellules cancéreuses et à étudier les mécanismes impliqués dans ce processus.

Dans une autre recherche, les propriétés cytotoxiques et antioxydantes de l'extrait de CO2 supercritique (SCE) d'une barbe de vieillard (Usnea barbata) ont été étudiées sur des cellules C6. Il est intéressant de noter que ces cellules présentent des niveaux accrus d'activité de la glycéryl phosphate déshydrogénase en réponse aux glucocorticoïdes.

Tissu
Cerveau
Maladie
Gliome
Synonymes
  • C-6
  • C 6
  • RGC-6
  • RGC6
  • RGc6

02Classification

Organisme
Rat
Sexe
Homme
Propriétés de croissance
Adepte
Niveau de biosécurité
1

03Caractéristiques

Morphologie
De type fibroblastique
Type de cellule
Cellules gliales
Temps de doublement
24 heures

04Identifiants

Référence
C6 (numéro de catalogue Cytion 500142)
Numéro d'identification fiscale NCBI
10116
Cellosaurus
CVCL_0194

05Expression et sensibilité

Récepteurs exprimés
Glucocorticoïde
Virus
Positif pour le LCMV
Sensibilité aux virus
Stomatite vésiculaire (Indiana), vaccine, herpès simplex
Résistance aux virus
Poliovirus 3
Transcriptase inverse
Négatif
Produits
Protéine S-100, production de glycéryl phosphate déshydrogénase en réponse aux glucocorticoïdes, somatotrophine.

06Manipulation et culture

Milieu de culture
RPMI 1640, w : 2.0 mM Glutamine stable, w : 2.0 g/L NaHCO3 (numéro d'article Cytion 820700a)
Atmosphère d'incubation

37°C, 5%CO2, atmosphère humidifiée.

Compléments alimentaires
Compléter le milieu avec 10% de FBS
Réactif de dissociation
Accutase
Repiquage
Retirer l'ancien milieu des cellules adhérentes et les laver avec du PBS dépourvu de calcium et de magnésium. Pour les flacons T25, utiliser 3-5 ml de PBS, et pour les flacons T75, 5-10 ml. Ensuite, recouvrir complètement les cellules avec Accutase, en utilisant 1 à 2 ml pour les flacons T25 et 2,5 ml pour les flacons T75. Laisser les cellules incuber à température ambiante pendant 8-10 minutes pour les détacher. Après incubation, mélanger délicatement les cellules avec 10 ml de milieu pour les remettre en suspension, puis centrifuger à 300xg pendant 3 minutes. Jeter le surnageant, remettre les cellules en suspension dans du milieu frais et les transférer dans de nouveaux flacons contenant déjà du milieu frais.
Densité de semis
1 x 104 cellules/cm2 donnera une couche confluente en environ 4 jours.
Renouvellement des fluides
2 à 3 fois par semaine
Récupération après le dégel
Après décongélation, ensemencer les cellules à raison de 5 x 104 cellules/cm2 et laisser les cellules se remettre du processus de congélation et adhérer pendant au moins 24 heures.
Décongélation et mise en culture
  1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

  2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

  3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

  4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

  5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

  6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

  7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

  8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

07Contrôle qualité et cryoconservation

Stérilité

La contamination par les mycoplasmes est exclue à l'aide de tests basés sur la PCR et de méthodes de détection des mycoplasmes basées sur la luminescence.

Pour s'assurer de l'absence de contamination bactérienne, fongique ou levurienne, les cultures cellulaires font l'objet d'inspections visuelles quotidiennes.

Milieu de congélation
Comme milieu de cryoconservation, nous utilisons un milieu de croissance complet (comprenant du FBS) + 10 % de DMSO pour une viabilité adéquate après décongélation, ou CM-1 (numéro de catalogue 800100 de Cytion), qui comprend des osmoprotectants et des stabilisateurs métaboliques optimisés pour améliorer la récupération et réduire le stress induit par la cryogénisation.
Conditions de stockage

Pour une conservation à long terme, placer les flacons dans de l'azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre -150 et -196 °C environ. Le stockage à -80 °C n'est acceptable qu'en tant qu'étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l'azote liquide.

Conditions de livraison

Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées sur glace sèche dans des emballages isolés et validés, avec suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d'environ -78 °C tout au long du transport. À la réception, inspecter immédiatement le conteneur et transférer sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié.

08Donateur

Âge du donneur
Non spécifié