BT-20-celler

BT-20-cellelinjen er en human brystkreftcellelinje som ble etablert i 1958 fra ondartet vev fra en 74 år gammel kaukasisk kvinnelig pasient. Denne cellelinjen har en epitel-lignende morfologi og brukes ofte i forskning som fokuserer på brystkreftbiologi, særlig i studier som undersøker hormonell regulering av kreftvekst, genuttrykk og effekten av terapeutiske midler mot brystkreft.

BT-20-celler kjennetegnes ved at de er i stand til å danne svulster når de implanteres i mus med svekket immunforsvar, og fungerer dermed som en nyttig in vivo-modell for brystkreft. Disse cellene uttrykker reseptorer for østrogen, progesteron og androgen, noe som gjør dem relevante for studier av hormonresponsveier. I tillegg har genetiske analyser av BT-20-celler avdekket mutasjoner i gener som TP53 og PIK3CA, som er vanlige ved brystkreft, noe som støtter bruken av dem i genetisk og farmakologisk forskning.

In vitro brukes BT-20-celler til å studere mekanismene bak kreftcellers spredning, migrasjon og invasjon. De brukes også til å vurdere cytotoksisiteten til cellegift, noe som gjør dem avgjørende for preklinisk testing av kreftlegemidler. BT-20-cellenes tilpasningsevne til ulike dyrkingsforhold og deres robuste vekst in vitro gjør dem til en verdifull ressurs for kreftforskningslaboratorier som fokuserer på de underliggende mekanismene bak brystkreft og utvikling av nye behandlingsstrategier.

37 °C, 5 %_CO2, befuktet atmosfære.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mykoplasma-kontaminering utelukkes ved hjelp av både PCR-baserte analyser og luminescensbaserte metoder for påvisning av mykoplasma.

For å sikre at det ikke finnes bakterie-, sopp- eller gjærkontaminering, blir cellekulturene inspisert visuelt hver dag.

For langtidsoppbevaring plasseres hetteglassene i flytende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Lagring ved -80 °C er kun akseptabelt som et kort mellomtrinn før overføring til flytende nitrogen.

Kryopreserverte cellelinjer sendes på tørris i validert, isolert emballasje med tilstrekkelig kjølemiddel til å opprettholde en temperatur på ca. -78 °C under hele transporten. Ved mottak skal beholderen inspiseres umiddelbart, og hetteglassene skal straks overføres til egnet lagringsplass.

Hos Cytion står vi bak kvaliteten og levedyktigheten til produktene våre. Vi garanterer at cellene våre vil være levedyktige ved starten av dyrkingen i 60 dager etter at de er sendt fra våre anlegg. Vi forsikrer at alle materialer er i samsvar med spesifikasjonene som er beskrevet i analysesertifikatet og/eller produktarket

For fullstendig informasjon, se vår <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantierklæring