SK-N-SH

La línea celular SK-N-SH es un modelo de neuroblastoma humano establecido originalmente a partir de una aspiración de médula ósea de un niño con neuroblastoma metastásico. Se utiliza ampliamente en la investigación del cáncer, en particular para estudiar la diferenciación neuronal, la biología del neuroblastoma y las intervenciones terapéuticas. La línea celular se destaca por su heterogeneidad y su capacidad para diferenciarse en fenotipos de tipo neuronal y no neuronal bajo condiciones adecuadas, lo que imita fielmente la diversidad celular observada en los tumores de neuroblastoma.

El análisis cromosómico de SK-N-SH reveló un cariotipo casi diploide con anomalías numéricas y estructurales. La línea presenta de manera constante una trisomía del cromosoma 7, junto con translocaciones que involucran a los cromosomas 9 y 17. Específicamente, un segmento del cromosoma 17 se transloca al cromosoma 22, lo que da lugar a una trisomía parcial del cromosoma 17. A pesar de estas alteraciones, las células SK-N-SH presentan características cariotípicas relativamente estables en comparación con otros modelos de neuroblastoma, lo que las hace adecuadas para estudiar las aberraciones cromosómicas en el neuroblastoma.

Desde el punto de vista funcional, las células SK-N-SH poseen propiedades neuronales y expresan marcadores de neuroblastoma, incluidas las enzimas de síntesis de neurotransmisores, lo cual es indicativo de su origen en la cresta neural. Es importante destacar que se puede inducir a las células SK-N-SH a diferenciarse en células de tipo neuronal con cambios morfológicos y bioquímicos. Agentes como el ácido retinoico se utilizan comúnmente para desencadenar esta diferenciación, lo que da lugar a un mayor crecimiento de neuritas y a la expresión de marcadores neuronales. Esta propiedad convierte a las células SK-N-SH en una herramienta valiosa para examinar las vías de diferenciación neuronal, la neurotoxicidad y las dianas terapéuticas del neuroblastoma.

Las células SK-N-SH sirven como un modelo robusto y versátil para investigar la progresión del neuroblastoma, la diferenciación neuronal y las respuestas terapéuticas. Su estabilidad cariotípica y su capacidad para diferenciarse en fenotipos neuronales proporcionan una plataforma para la investigación traslacional en cánceres pediátricos y el desarrollo neuronal.

37 °C, 5 % de CO₂, atmósfera humidificada.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Se descarta la contaminación por micoplasmas mediante ensayos basados en PCR y métodos de detección de micoplasmas basados en luminiscencia.

Para garantizar que no haya contaminación bacteriana, fúngica o por levaduras, los cultivos celulares se someten a inspecciones visuales diarias.

Para la conservación a largo plazo, coloque los viales en nitrógeno líquido en fase de vapor a una temperatura de entre −150 y −196 °C, aproximadamente. El almacenamiento a −80 °C solo es aceptable como un paso intermedio breve antes de transferirlos al nitrógeno líquido.

Las líneas celulares criopreservadas se envían en hielo seco, en un embalaje aislante validado que contiene suficiente refrigerante para mantener una temperatura de aproximadamente −78 °C durante todo el transporte. Al recibir el envío, revise el contenedor de inmediato y traslade los viales sin demora al lugar de almacenamiento adecuado.

En Cytion, respaldamos la calidad y la viabilidad de nuestros productos. Garantizamos que nuestras células serán viables al inicio del cultivo durante 60 días a partir de la fecha de envío desde nuestras instalaciones. Aseguramos que todos los materiales cumplen con las especificaciones descritas en el Certificado de Análisis y/o la Ficha del Producto.

Para obtener más detalles, consulte nuestra Declaración de garantía.