SKW-3

SKW-3-cellelinjen, som opprinnelig ble antatt å stamme fra perifert blod fra en 61 år gammel mann med diagnosen kronisk lymfatisk leukemi (KLL), representerer et viktig interessepunkt i kreftforskningen, særlig når det gjelder studier av B-celle-leukemier. Over tid har kritiske revurderinger ved hjelp av STR-profilering (Short Tandem Repeat) belyst et viktig problem - KW-3-cellene er ikke en ren linje fra KLL-pasienten, men er i stedet kontaminert, og er nå identifisert som et derivat av KE-37-cellelinjen. Denne avsløringen har store konsekvenser for tidligere forskning og fremtidige studier, og understreker behovet for streng autentisering av cellelinjer for å sikre eksperimentell nøyaktighet.

KE-37, som SKW-3-cellene egentlig stammer fra, er en B-cellelinje som er etablert fra en pasient med akutt lymfoblastisk leukemi (ALL). Kontamineringen gjør at SKW-3-linjen skifter opprinnelse fra KLL til ALL, noe som drastisk endrer den biologiske konteksten og nytteverdien av SKW-3-linjen. For forskere betyr dette at alle funn eller data som tidligere har blitt tilskrevet KLL-spesifikke mekanismer ved bruk av SKW-3, må evalueres kritisk og eventuelt revideres. Omklassifiseringen til et derivat av KE-37 gjør det nødvendig å endre bruken av SKW-3-celler til studier som er mer relevante for ALL og de underliggende mekanismene, i stedet for KLL.

37 °C, 5 %_CO2, befuktet atmosfære.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mykoplasma-kontaminering utelukkes ved hjelp av både PCR-baserte analyser og luminescensbaserte metoder for påvisning av mykoplasma.

For å sikre at det ikke finnes bakterie-, sopp- eller gjærkontaminering, blir cellekulturene inspisert visuelt hver dag.

For langtidsoppbevaring plasseres hetteglassene i flytende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Lagring ved -80 °C er kun akseptabelt som et kort mellomtrinn før overføring til flytende nitrogen.

Kryopreserverte cellelinjer sendes på tørris i validert, isolert emballasje med tilstrekkelig kjølemiddel til å opprettholde en temperatur på ca. -78 °C under hele transporten. Ved mottak skal beholderen inspiseres umiddelbart, og hetteglassene skal straks overføres til egnet lagringsplass.

Hos Cytion står vi bak kvaliteten og levedyktigheten til produktene våre. Vi garanterer at cellene våre vil være levedyktige ved starten av dyrkingen i 60 dager etter at de er sendt fra våre anlegg. Vi forsikrer at alle materialer er i samsvar med spesifikasjonene som er beskrevet i analysesertifikatet og/eller produktarket

For fullstendig informasjon, se vår <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantierklæring