Cellules Caco-2

Les cellules Caco-2 constituent un modèle in vitro avancé de la barrière intestinale humaine, principalement en raison de leur différenciation en une monocouche cellulaire qui ressemble étroitement aux entérocytes tapissant l’intestin grêle. Lors de la culture de la lignée cellulaire Caco-2 sur des inserts de culture tissulaire dotés de filtres en polycarbonate, les cellules Caco-2 subissent une différenciation spontanée. La différenciation des cellules Caco-2 entraîne l’expression de types cellulaires spécialisés, dotés de microvillosités, d’enzymes et de transporteurs, reflétant ainsi les caractéristiques et les mécanismes complexes observés in vivo.

Dans le cadre des modèles d’études sur l’absorption intestinale, les cellules Caco-2, dérivées d’un patient atteint d’un adénocarcinome colorectal humain, jouent un rôle essentiel en raison de leur capacité à développer des valeurs élevées de TEER, ce qui indique des jonctions serrées intactes et une fonction de barrière épithéliale intacte. Ces propriétés sont essentielles pour des essais tels que l’essai d’efflux du cholestérol et les recherches sur le transport cellulaire, y compris le mouvement des nanoparticules lipidiques et la détection des interactions protéiques.

Les cellules Caco-2 jouent un rôle central dans les études sur l’absorption intestinale, offrant une approximation in vitro fiable de l’épithélium intestinal. Imitant les entérocytes intestinaux, ces cellules facilitent l’analyse de l’absorption des médicaments administrés par voie orale en simulant la barrière intestinale. Les chercheurs utilisent les cellules Caco-2 pour prédire comment les substances traversent la muqueuse intestinale, ce qui est essentiel pour établir le profil pharmacocinétique des médicaments administrés par voie orale. De plus, elles constituent un outil clé pour étudier l’absorption, l’homéostasie et le transport du cholestérol intestinal, processus vitaux pour comprendre le métabolisme des lipides et les maladies associées.

Les cellules Caco-2 demeurent une pierre angulaire de la recherche sur le carcinome du côlon et en toxicologie, non seulement en raison de leur pertinence pour les études gastro-intestinales chez l’humain, mais aussi pour leur rôle dans la fourniture d’informations détaillées sur la voie biliaire, le métabolisme des xénobiotiques dans le côlon, ainsi que dans la recherche sur le cancer et la toxicologie.

37 °C, 5 % _de CO_₂, atmosphère humidifiée.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

La contamination par les mycoplasmes est exclue à l'aide de tests basés sur la PCR et de méthodes de détection des mycoplasmes par luminescence.

Afin de s’assurer qu’il n’y a aucune contamination bactérienne, fongique ou par des levures, les cultures cellulaires font l’objet d’inspections visuelles quotidiennes.

Pour une conservation à long terme, placez les flacons dans de l’azote liquide en phase vapeur à une température comprise entre environ −150 et −196 °C. L’entreposage à −80 °C n’est acceptable qu’à titre d’étape intermédiaire de courte durée avant le transfert dans l’azote liquide.

Les lignées cellulaires cryoconservées sont expédiées dans de la glace sèche, dans un emballage isotherme validé contenant suffisamment de réfrigérant pour maintenir une température d’environ −78 °C pendant tout le transport. À la réception, inspectez immédiatement le conteneur et transférez sans délai les flacons dans un lieu de stockage approprié.

Chez Cytion, nous garantissons la qualité et la viabilité de nos produits. Nous garantissons que nos cellules seront viables au début de la culture pendant 60 jours à compter de leur expédition depuis nos installations. Nous assurons que tous les matériaux sont conformes aux spécifications décrites dans le certificat d’analyse et/ou la fiche technique du produit.

Pour plus de détails, veuillez consulter notre déclaration de garantie.