Gå direkte til indholdet
AH-130
Væv
Lever
Sygdom
Hepatocellulært karcinom
Metastasested
Ascites
Synonymer
Yoshida AH-130, Yoshida AH130, AH130, AH 130, AH-130 Yoshida, AH130-TC, AH130/P

Dokumenter

AH-130

Cell line · Varenummer 500412

Yoshida et al. have established the ascites hepatoma by converting the aminoazo dyeinduced hepatoma of the rat into the ascetic form (Yoshida 1956). AH-130 i...

€800.00ekskl. moms og fragt
På lager
Lot
Anbefalet (det nyeste parti)
  • CoA
1

01Generelle oplysninger

Beskrivelse
Yoshida et al. har etableret ascites-hepatom ved at omdanne det aminoazo-farvestofinducerede hepatom hos rotten til den asketiske form (Yoshida 1956). AH-130 er en stamme af ascites-hepatom, der består af frie tumorceller, og der er kun små øer af tumorøer til stede. Den cellelinje, der beskrives her, blev etableret som in vitro-cellekultur fra denne Yoshida AH-130-stamme af ascites-hepatom.
Væv
Lever
Sygdom
Hepatocellulært karcinom
Metastasested
Ascites
Anvendelser
Forskning i hepatocellulært karcinom; tumorbiologi i rotte-lever; Yoshida-ascites-hepatom-modellen; testning af lægemiddelfølsomhed og cytotoksicitet; undersøgelser af følsomhed over for adenovirus; præklinisk modellering af leverkræft hos Sprague-Dawley-rotter; biologi hos adhærente og suspensionsvoksende tumorer
Synonymer
  • Yoshida AH-130
  • Yoshida AH130
  • AH130
  • AH 130
  • AH-130 Yoshida
  • AH130-TC
  • AH130/P

02Klassificering

Organisme
Rotte
Køn
Uspecificeret
Vækstegenskaber
Adhæsion og suspension
GMO-status
GMO-fri
Oplysninger om GMO-status
No genetic modification; transplantable rat ascites hepatoma derived from aminoazo dye-induced primary hepatoma by Yoshida (1956)
Biosikkerhedsniveau
1

03Egenskaber

Morfologi
Runde suspensionsceller, trekantede fastsiddende celler
Celletype
Celler fra hepatocellulært karcinom (hepatokarcinom)
Tumorfremkaldende
Yeees, i Wistar og andre stammer.
Fordoblingstid
ca. 18 til 24 timer (hurtigt voksende; BD = hurtig vækst bekræftet)

04Identifikatorer

Kildehenvisning
AH-130 (Cytion katalognummer 500412)
NCBI-skattenummer
10116
Cellosaurus
CVCL_4367

05Udtryk og modtagelighed

Vira
RAP-testen er negativ. .
Virusfølsomhed
Meget følsom over for humane adenovirus

06Håndtering og opdræt

Næringsmedium
DMEM:Ham's F12 (1:1), w: 3,1 g/L Glucose, w: 2,5 mM L-Glutamin, w: 15 mM HEPES, w: 0,5 mM Sodium pyruvate, w: 1,2 g/L NaHCO3 (Cytion artikelnummer 820400a)
Inkubationsatmosfære

37°C, 5%CO2, befugtet atmosfære.

Kosttilskud
Suppler mediet med 10% FBS
Dissociationsreagens
Accutase
Oddyrkning
Saml de suspenderede celler i et 15 ml rør, og vask forsigtigt de klæbende celler med PBS uden calcium og magnesium (brug 3-5 ml til T25-kolber og 5-10 ml til T75-kolber). Påfør Accutase (1-2 ml til T25-kolber, 2,5 ml til T75-kolber) for at sikre fuld dækning af cellelaget. Lad cellerne inkubere ved stuetemperatur i 10 minutter. Efter inkubationen kombineres og centrifugeres både suspensionen og de vedhæftede celler. Efter centrifugering resuspenderes cellepelleten forsigtigt, og cellesuspensionen overføres til nye kolber, der indeholder frisk medium.
Opdelingsforhold
1 til 3
Såtæthed
2 x 104 celler/cm2
Væskeudskiftning
Hver 3. til 5. dag
Genopretning efter optøning
Hurtig
Optøning og dyrkning
  1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

  2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

  3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

  4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

  5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

  6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

  7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

  8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

07Kvalitetskontrol og kryopræservering

Sterilitet

Mycoplasma-kontaminering udelukkes ved hjælp af både PCR-baserede assays og luminescensbaserede mycoplasma-detektionsmetoder.

For at sikre, at der ikke er nogen bakterie-, svampe- eller gærforurening, underkastes cellekulturerne daglige visuelle inspektioner.

Frysemedium
Som kryopræserveringsmedium bruger vi komplet vækstmedium (inklusive FBS) + 10 % DMSO for tilstrækkelig levedygtighed efter optøning eller CM-1 (Cytion-katalognummer 800100), som indeholder optimerede osmobeskyttende stoffer og metaboliske stabilisatorer for at forbedre genopretningen og reducere kryo-induceret stress.
Opbevaringsbetingelser

For langtidsopbevaring anbringes hætteglas i flydende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Opbevaring ved -80 °C er kun acceptabelt som et kort mellemtrin før overførsel til flydende nitrogen.

Leveringsbetingelser

Kryopræserverede cellelinjer sendes på tøris i valideret, isoleret emballage med tilstrækkeligt kølemiddel til at opretholde ca. -78 °C under hele transporten. Ved modtagelse skal beholderen straks inspiceres, og hætteglassene skal straks overføres til passende opbevaring.

08Donor

Race / underart
Sprague-Dawley
Donorens alder
Uspecificeret alder
Etnisk tilhørsforhold
Ikke relevant (rotte-cellelinje; Sprague-Dawley i Q)