Gå til innholdet
AH-130
Vev
Lever
Sykdom
Hepatocellulært karsinom
Metastaseområde
Ascites
Synonymer
Yoshida AH-130, Yoshida AH130, AH130, AH 130, AH-130 Yoshida, AH130-TC, AH130/P

Dokumenter

AH-130

Cell line · Produktnummer 500412

Yoshida et al. have established the ascites hepatoma by converting the aminoazo dyeinduced hepatoma of the rat into the ascetic form (Yoshida 1956). AH-130 i...

€800.00ekskl. mva. og frakt
På lager
Lot
Anbefalt (det ferskeste partiet)
  • CoA
1

01Generell informasjon

Beskrivelse
Yoshida og medarbeidere har etablert ascites hepatom ved å omdanne aminoazofargestoffindusert hepatom hos rotte til asketisk form (Yoshida 1956). AH-130 er en stamme av ascites hepatom som består av frie tumorceller, bare små øyer av tumorøyer er til stede. Cellelinjen som beskrives her, ble etablert som in vitro-cellekultur fra denne Yoshida AH-130-stammen av ascites hepatom.
Vev
Lever
Sykdom
Hepatocellulært karsinom
Metastaseområde
Ascites
Søknader
Forskning på hepatocellulært karsinom; biologi ved levertumorer hos rotter; Yoshida-ascites-hepatom-modellen; testing av legemiddelfølsomhet og cytotoksisitet; studier av følsomhet overfor adenovirus; preklinisk modellering av leverkreft hos Sprague-Dawley-rotter; biologi ved adherente/suspenderte tumorer
Synonymer
  • Yoshida AH-130
  • Yoshida AH130
  • AH130
  • AH 130
  • AH-130 Yoshida
  • AH130-TC
  • AH130/P

02Klassifisering

Organisme
Rotte
Sex
Uspesifisert
Vekstegenskaper
Adhesjon og suspensjon
GMO-status
Uten GMO
Detaljer om GMO-status
No genetic modification; transplantable rat ascites hepatoma derived from aminoazo dye-induced primary hepatoma by Yoshida (1956)
Biosikkerhetsnivå
1

03Egenskaper

Morfologi
Runde suspensjonsceller, trekantede adherente celler
Celletype
Celler fra hepatocellulært karsinom (hepatokarsinom)
Tumorinduserende
Ja, i Wistar og andre stammer.
Fordoblingstid
ca. 18 til 24 timer (rask vekst; BD = bekreftet rask)

04Identifikatorer

Kildehenvisning
AH-130 (Cytion-katalognummer 500412)
NCBI-skattenummer
10116
Cellosaurus
CVCL_4367

05Uttrykk og mottakelighet

Virus
RAP-test negativ. .
Virusfølsomhet
Svært følsom overfor humane adenovirus

06Håndtering og kultur

Næringsmedium
DMEM:Ham's F12 (1:1), w: 3,1 g/L glukose, w: 2,5 mM L-glutamin, w: 15 mM HEPES, w: 0,5 mM natriumpyruvat, w: 1,2 g/L NaHCO3 (Cytion artikkelnummer 820400a)
Inkubasjonsatmosfære

37 °C, 5 %CO2, befuktet atmosfære.

Kosttilskudd
Suppler mediet med 10 % FBS
Dissosiasjonsmiddel
Accutase
Subkultivering
Samle suspensjonscellene i et 15 ml rør, og vask de adherente cellene forsiktig med PBS uten kalsium og magnesium (bruk 3-5 ml for T25-kolber og 5-10 ml for T75-kolber). Påfør Accutase (1-2 ml for T25-kolber, 2,5 ml for T75-kolber) og sørg for full dekning av cellelaget. La cellene inkubere i romtemperatur i 10 minutter. Etter inkubasjon kombineres og sentrifugeres både suspensjonen og de adherente cellene. Etter sentrifugering resuspenderes cellepelleten forsiktig, og cellesuspensjonen overføres til nye kolber som inneholder nytt medium.
Oppdelingsforhold
1 til 3
Såtetthet
2 x 104 celler/cm2
Væskefornyelse
Hver 3. til 5. dag
Gjenoppretting etter tining
Rask
Tining og dyrking
  1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

  2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

  3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

  4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

  5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

  6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

  7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

  8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

07Kvalitetskontroll og kryokonservering

Sterilitet

Mykoplasma-kontaminering utelukkes ved hjelp av både PCR-baserte analyser og luminescensbaserte metoder for påvisning av mykoplasma.

For å sikre at det ikke finnes bakterie-, sopp- eller gjærkontaminering, blir cellekulturene inspisert visuelt hver dag.

Frysemedium
Som kryopreserveringsmedium bruker vi komplett vekstmedium (inkludert FBS) + 10 % DMSO for tilstrekkelig levedyktighet etter opptining, eller CM-1 (Cytion-katalognummer 800100), som inneholder optimaliserte osmobeskyttende midler og metabolske stabilisatorer for å øke utvinningen og redusere kryoindusert stress.
Oppbevaringsbetingelser

For langtidsoppbevaring plasseres hetteglassene i flytende nitrogen i dampfase ved ca. -150 til -196 °C. Lagring ved -80 °C er kun akseptabelt som et kort mellomtrinn før overføring til flytende nitrogen.

Fraktvilkår

Kryopreserverte cellelinjer sendes på tørris i validert, isolert emballasje med tilstrekkelig kjølemiddel til å opprettholde en temperatur på ca. -78 °C under hele transporten. Ved mottak skal beholderen inspiseres umiddelbart, og hetteglassene skal straks overføres til egnet lagringsplass.

08Donor

Rase / underart
Sprague-Dawley
Donorens alder
Uspesifisert alder
Etnisitet
Ikke relevant (rotte-cellelinje; Sprague-Dawley i Q)