NCI-H1048

NCI-H1048 ist eine menschliche Zelllinie des kleinzelligen Lungenkarzinoms (SCLC), die aus einem Lungentumor eines erwachsenen Patienten gewonnen wurde und häufig als Modell für neuroendokrinen Lungenkrebs verwendet wird. Das kleinzellige Lungenkarzinom ist durch schnelles Wachstum, frühe Metastasierung und eine starke Assoziation mit neuroendokriner Differenzierung gekennzeichnet, und NCI-H1048 spiegelt viele dieser Merkmale wider. Die Zellen wachsen typischerweise in Suspension oder als lose anhaftende Cluster und weisen eine für SCLC typische Morphologie auf, einschließlich kleiner, runder Zellen mit hohem Kern-Zytoplasma-Verhältnis.

Auf molekularer Ebene weist NCI-H1048 Merkmale auf, die für das SCLC charakteristisch sind, darunter Veränderungen in wichtigen Tumorsuppressor-Signalwegen wie TP53 und RB1, die bei dieser Erkrankung häufig inaktiviert sind. Die Zelllinie exprimiert neuroendokrine Marker, darunter Proteine, die mit der Hormonsekretion und neuronalen Differenzierung assoziiert sind, was sie zu einem relevanten Modell für die Untersuchung neuroendokriner Signalwege und der Tumorbiologie macht. Wie andere SCLC-Modelle kann sie auch eine Amplifikation oder Überexpression onkogener Treiber aufweisen, die an Proliferation und Überleben beteiligt sind und zu ihrem aggressiven Phänotyp beitragen.

NCI-H1048 wird in der Forschung eingesetzt, die sich auf die Pathogenese des kleinzelligen Lungenkarzinoms, die Arzneimittelsensitivität und Resistenzmechanismen konzentriert. Sie ist besonders wertvoll für die Bewertung von Chemotherapeutika und zielgerichteten Therapien in einem Krankheitskontext, der für eine anfängliche Ansprechbarkeit auf die Behandlung, gefolgt von einem raschen Rückfall, bekannt ist. Die Zelllinie wird auch in Studien zur Plastizität von Tumorzellen, zur neuroendokrinen Differenzierung und zum Hochdurchsatz-Wirkstoffscreening eingesetzt. Wie bei vielen SCLC-Modellen können detaillierte mutationsspezifische Profile jedoch zwischen den Datensätzen variieren, und für Experimente, die präzise genomische Informationen erfordern, wird eine zusätzliche molekulare Charakterisierung empfohlen.

37°C, 5%_CO2, befeuchtete Atmosphäre.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

Medium

HITES medium supplemented with 5% fetal bovine serum: The base medium for this cell line is DMEM:F12 Medium (Catalog No. 820400a). To make the complete growth medium, add the following components to the base medium:

• 0.005 mg/ml Insulin
• 0.01 mg/ml Transferrin
• 30 nM Sodium selenite (final conc.)
• 10 nM Hydrocortisone (final conc.)
• 10 nM beta-estradiol (final conc.)
• extra 2 mM L-glutamine (for final conc. of 4.5 mM)
• 5% fetal bovine serum (final conc.)

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Eine Kontamination mit Mykoplasmen wird sowohl durch PCR-basierte Assays als auch durch lumineszenzbasierte Mykoplasmen-Nachweisverfahren ausgeschlossen.

Um sicherzustellen, dass keine Kontamination mit Bakterien, Pilzen oder Hefen vorliegt, werden die Zellkulturen täglich visuell überprüft.

Zur Langzeitkonservierung werden die Fläschchen in flüssigem Stickstoff bei etwa -150 bis -196 °C gelagert. Eine Lagerung bei -80 °C ist nur als kurzer Zwischenschritt vor der Überführung in flüssigen Stickstoff akzeptabel.

Kryokonservierte Zelllinien werden auf Trockeneis in einer validierten, isolierten Verpackung mit ausreichend Kühlmittel versandt, um während des gesamten Transports eine Temperatur von etwa -78 °C aufrechtzuerhalten. Prüfen Sie den Behälter bei Erhalt sofort und bringen Sie die Fläschchen unverzüglich in ein geeignetes Lager.

Bei Cytion stehen wir hinter der Qualität und Lebensfähigkeit unserer Produkte. Wir garantieren, dass unsere Zellen zu Beginn der Kultur für 60 Tage nach dem Versand aus unseren Einrichtungen lebensfähig sind. Wir versichern, dass alle Materialien mit den im Analysezertifikat und/oder Produktblatt beschriebenen Spezifikationen übereinstimmen

Ausführliche Informationen finden Sie in unserer <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantieerklärung