HBL-100-celler

HBL-100 är en human bröstepitelcellinje som ursprungligen härrör från bröstmjölk från en ammande mamma. Mjölken samlades in tre dagar efter förlossningen och trots att det inte fanns några tecken på bröstlesioner hos donatorn och ingen bröstcancer i släkten uppvisade cellerna en onormal karyotyp vid passage 7. Denna cellinje är anmärkningsvärd för sin förmåga att syntetisera en liten mängd laktos och att svara på stimulering med prolaktin eller östrogen genom att öka produktionen av kasein. Mikroskopiska analyser, t.ex. elektronmikrografier, har bekräftat förekomsten av mikrovilli, tonofibriller och desmosomer i dessa celler, vilket understryker deras typiska epiteliala egenskaper.

Cellinjen HBL-100 har dock stött på betydande komplikationer när det gäller identifiering och karakterisering. Det visade sig att den innehöll en Y-kromosom, vilket tyder på en felidentifiering eftersom cellinjen ursprungligen ansågs vara av kvinnligt ursprung. Ytterligare komplexitet uppstår genom förekomsten av SV40-genomsekvenser i cellinjen, vilket motsäger tidigare uppfattningar om att den var spontant odödliggjord. Dessa fynd har lett till debatter om ursprunget och den genetiska sammansättningen hos HBL-100, vilket gör den till en problematisk cellinje för forskning utan grundlig validering av dess egenskaper och ursprung.

37°C, 5%_CO2, befuktad atmosfär.

1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

Mykoplasmakontaminering utesluts med hjälp av både PCR-baserade analyser och luminiscensbaserade metoder för mykoplasmadiagnostik.

För att säkerställa att det inte finns någon kontaminering av bakterier, svamp eller jäst utsätts cellkulturerna för dagliga visuella inspektioner.

För långtidsförvaring, placera flaskorna i flytande kväve i ångfas vid ca -150 till -196 °C. Förvaring vid -80 °C är acceptabelt endast som ett kort mellanliggande steg innan överföring till flytande kväve.

Kryopreserverade cellinjer skickas på torris i validerade, isolerade förpackningar med tillräckligt med kylmedel för att hålla cirka -78 °C under hela transporten. Vid mottagandet ska behållaren omedelbart inspekteras och flaskorna utan dröjsmål överföras till lämplig förvaring.

På Cytion står vi bakom våra produkters kvalitet och livskraft. Vi garanterar att våra celler är livsdugliga vid odlingens början i 60 dagar efter leverans från våra anläggningar. Vi försäkrar att allt material överensstämmer med de specifikationer som beskrivs i analyscertifikatet och/eller produktbladet

För fullständig information, se vår <a href=""/Who-we-are/Warranty/"" hreflang=""x-default"">Garantiförklaring