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29 Oct 2026

Panc02細胞 — 膵管腺癌研究のための同系マウスモデル

A Syngeneic Murine Model for Pancreatic Ductal Adenocarcinoma Research

Panc02 Cell Line

Panc02細胞 — 膵管腺癌研究のための同系マウスモデル

作成日:2026年7月7日 | 最終確認日:2026年7月7日 | 著者:アンリ・シュヴェグラー

はじめに

そのPanc02細胞 この細胞株(Panc-02、Panc 02、Pan02、Pan-02、PAN 02、およびPanc02-H0としても知られる)は、C57BL/6マウスにおける化学的誘発腫瘍から樹立されたマウス膵管腺癌(PDAC)細胞株である。 Corbettらは1984年に、膵臓組織に3-メチルコラントレンを含有する綿糸を移植した後に発生した導管腺癌からこの細胞株を樹立したことを初めて報告した。[1] それ以来、Panc02は、膵臓腫瘍および膵管型癌の研究において、最も広く用いられている同系マウスモデルの一つとなっています。 完全な免疫能を有するC57BL/6系統との互換性により、このモデルは、腫瘍微小環境の研究、免疫腫瘍学の研究、および化学療法の併用療法、ナノ粒子薬物送達システム、消化管マイクロバイオームを標的とした免疫療法戦略を含む新規治療法の非臨床評価において、不可欠なものとなっている。

主なポイント

  • Panc02(CVCL_D627)は、C57BL/6マウスにおいて化学的に誘発された膵臓腫瘍から樹立されたマウス由来のPDAC細胞株であり、1984年に初めて樹立された。
  • 同系C57BL/6系統を背景としているため、完全な免疫能を備えた生体内実験が可能であり、腫瘍と免疫系の本来の相互作用を維持することができる。
  • Panc02は、膵臓腫瘍の微小環境を再現する同所性移植モデルに広く用いられている。
  • この細胞株は、化学療法耐性、新規薬剤送達システム、および免疫療法戦略を評価するための堅牢なプラットフォームとして機能する。
  • Panc02の細胞数倍加時間は約61時間であり、付着培養として増殖する。
  • Panc02を基に、特定の研究用途向けに、数多くの遺伝子改変派生株やレポーター株(例:ルシフェラーゼ発現変異体など)が作出されている。

Panc02とは何ですか?

Panc02(CVCL_D627)Murine PDAC Cell LineOriginC57BL/6 mouseMale donorEstablished 1984Induction3-methylcholanthrenecotton thread implantPancreatic tissueHistologyDuctal adenocarcinomaIrregular finger-likegrowth patternCell PropertiesAdherent growthDoubling time ~61 hSyngeneic C57BL/6GenomicsPDAC-relevantmutations confirmedDivergent vs. humanDerivativesPanc02-H7(more aggressive)Panc02-3P, Luc linesImplantation RoutesOrthotopic (pancreatic head) · Subcutaneous · Intraperitoneal
本文に記載されているPanc02細胞株の特性の概要。

Panc02は、C57BL/6由来のマウス膵管腺癌細胞株である(Cellosaurus登録番号 CVCL_D627)。これは、発がん物質による腫瘍形成を経て、雄のドナーマウスの膵臓組織から樹立されたものである。 この細胞株はがん細胞株に分類され、膵管組織から樹立されたものであり、膵管腺癌の組織学的特徴を再現している。ゲノム解析により、Panc02にはPDACの生物学に関連する変異が存在することが確認されており、メカニズム解明のための研究において、遺伝学的に定義された背景を提供している。[2] セルロサウルスの項目には、ドナーの年齢に関するデータは記載されていない。

比較特性評価の結果、Panc02は同所性移植モデルにおいて、不規則で指状の増殖パターンを示し、局所浸潤性および膵臓腺癌に特徴的な組織学的所見を呈することが確認された。[3] この細胞株の細胞数倍加時間は約61時間である。最も広く使用されている近交系の一つであるC57BL/6マウスとの同系相容性により、免疫系が正常な前臨床モデルにおいて特に有用である。 Panc02を生体内で連続的に継代した結果、次第に侵襲性の高い派生株が得られ、その中でも最も確立されているのがPanc02-H7であり、このモデルが腫瘍の進化や転移の進行を研究する能力を有していることが示されている。[4]

細胞培養に関する情報

📋 Panc02 — 文化情報
分離試薬
Accutase、37°Cで10分間
凍結培地
CM-1
人口倍増時間
約61時間
成長タイプ
アドヘレント
Panc02細胞の低コンフルエンシー
Panc02 – 低コンフルエンス
Panc02細胞の高密度培養
Panc02 – 高密度

Panc02細胞の利点

Panc02の最大の利点は、C57BL/6マウス系統との同系相容性にある。これにより、免疫機能が完全に保たれた宿主で実験を行うことが可能となり、研究者は膵臓腫瘍細胞と宿主の免疫系との間の真の相互作用を研究することができる。 免疫不全マウスを必要とする異種移植モデルとは異なり、Panc02システムではT細胞応答、マクロファージの活性、およびナチュラルキラー細胞の機能が維持されており、これらはすべて現代の免疫療法研究において極めて重要な要素である。 この特徴により、Panc02は膵臓腫瘍微小環境におけるCD4陽性およびCD8陽性Tリンパ球の動態を研究するための最適なモデルとなっている。

Panc02は、移植経路の面でも非常に汎用性が高い。 研究者は、実験の目的に応じて、皮下移植、同所移植、または腹腔内移植を行うことができます。膵頭部に細胞を直接注入する同所移植モデルは、ヒトの膵臓腺癌(PDAC)の解剖学的および免疫学的状況を最も忠実に再現しています。[5] さらに、Panc02の改変派生株が利用可能であり、これには以下のようなルシフェラーゼ発現系統も含まれる。Panc02-Luc細胞 — 生きた動物における腫瘍の増殖や転移を、非侵襲的な生物発光イメージングによって観察することを可能にし、実験の処理能力を大幅に向上させるとともに、動物の使用数を削減する。

実用的な観点から見ると、Panc02は、倍加時間が約61時間と明確に特徴づけられた、堅牢で信頼性の高い増殖を示す付着性細胞株です。幅広い化学療法剤や免疫調節療法に対して再現性のある反応を示すため、薬剤の比較研究を行う上で優れたプラットフォームとなっています。 40年以上にわたるPanc02に関する膨大な公開文献は、研究者に豊富な過去のベンチマークデータと検証済みの実験プロトコルを提供しており、新規研究室の参入障壁を低くしています。

Panc02細胞の限界

Panc02は広く利用されているものの、生物学的に重要な注意点がある。この細胞株は、ヒト膵管腺癌(PDAC)に典型的な段階的な変異の蓄積ではなく、化学発癌によって樹立されたものである。 ヒトの膵管腺癌では、発癌性KRAS変異、CDKN2Aの不活性化、TP53変異、およびSMAD4の喪失が最も一般的に認められる。Panc02のゲノムシーケンシングにより、これとは異なる変異パターンが明らかになっており、このことが薬剤反応データをヒト患者に直接適用することを制限する可能性がある。[2] したがって、研究者らはPanc02の結果を、臨床転帰を直接予測するものではなく、仮説生成のためのものとして解釈すべきである。

もう一つの制限は、親株であるPanc02細胞の転移能が比較的低いことである。この細胞株は、ベースラインの状態では自発的に効率的に転移しないため、進行期疾患の研究における有用性が制限される可能性がある。転移能の高いモデルを求める研究者は、Panc02-H7などの連続継代された派生株を使用する必要がある。[4] あるいは、特殊な生体内選抜法を採用することもある。このような派生系統の作出は実験を複雑にするだけでなく、親系統からの表現型のドリフトをさらに引き起こす可能性がある。

最後に、Panc02はマウス由来の細胞株であるため、ヒト膵臓がんの遺伝的異質性や間質構造の複雑さを完全に再現することはできない。マウスの腫瘍微小環境は、免疫能を有しているものの、免疫細胞のサブセット構成、サイトカイン環境、および間質構造の点で、ヒトのそれとは異なっている。 したがって、Panc02を用いた研究結果は、候補となる治療法を臨床応用へと進める前に、補完的なヒト細胞株モデルや患者由来のオルガノイドを用いて検証されるべきである。

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応用分野

同系同所性モデルおよび腫瘍微小環境の研究

Panc02は、同系同所性PDACモデル構築の基盤となるものです。 Parteckeらは2011年にこのモデルに関する画期的な特性評価を行い、C57BL/6マウスの膵頭部にPanc02を同所的に注入すると、膵腺癌と一致する局所浸潤性および組織学的特徴を持つ腫瘍が生じることを実証した。 [5] 重要な点として、この研究では、Panc02腫瘍が、6606PDA細胞のより球状の増殖とは対照的に、不規則で指状の増殖パターンを示すこと、また、このモデルではMRIを用いて腫瘍の経時的増殖を確実にモニタリングできることが示されました。 これらの知見により、Panc02は膵臓がん研究における臨床的に意義のある免疫能を有するプラットフォームとして確立された。

それ以来、同系同所性Panc02モデルは、免疫抑制的な腫瘍微小環境の研究に広く応用されてきた。 Gnerlichらは、Panc02腫瘍が制御性T細胞(Treg)を動員して抗腫瘍免疫を抑制すること、およびIL-6を分泌するように改変したPanc02細胞がTh17細胞の誘導を促進し、腫瘍を有するマウスの生存率を改善することを実証した。 [6] この研究は、腫瘍免疫微小環境の可塑性、およびこのモデルにおけるサイトカインを用いた操作戦略の実現可能性を浮き彫りにした。

さらに最近では、GaoらはPanc02同所性モデルを用いて、補体に基づく免疫療法を評価した。[7] Panc02細胞上で膜結合型プロペルディンを発現させることで、彼らはガラクトース-α-1,3-ガラクトースを介した補体活性化を増幅させ、補体依存性細胞傷害性を増強した。 このモデルは、この免疫介入に対して高い感受性を示し、膵臓腫瘍微小環境における自然免疫経路を解明する上でのその価値を裏付けた。 Parkらはさらに、Panc02を移植したマウスモデルを用いて、膵臓がんの進行を促進する要因としての糖尿病関連炎症を調査し、量子ドット標識アプタマーを用いて循環腫瘍細胞を検出した。[8]

化学療法耐性と新規薬物送達システム

ゲムシタビン耐性は膵臓がんにおける決定的な臨床的課題であり、Panc02はこの問題の解明や新規治療戦略の評価に広く用いられてきた。 Takhshaらは、同系Panc02マウスモデルにおいて、ATG4B阻害剤UAMC-2526が、低酸素状態の腫瘍微小環境におけるオートファジーを抑制することで、ゲムシタビンの化学療法効果を著しく増強することを実証した。 [9] この研究は、オートファジーの阻害がPDAC細胞を標準的な化学療法に対して感受性化させることを明らかにし、併用療法の理論的根拠を提供した。 Zhangらはこの概念をさらに発展させ、ジスルフィド結合を介してトブラマイシンとゲムシタビンを共有結合させる抗生物質-薬剤複合体(Tob-SS-Gmナノ粒子)を開発した。これは、シチジンデアミナーゼを発現し、それによってゲムシタビンを分解する腫瘍内細菌を標的とするものである。 [10] Panc02細胞を用いた試験により、この結合によって抗菌活性と化学療法活性の両方が維持されることが確認され、化学療法耐性に対する二重機能戦略が確立された。

ナノ粒子を用いた薬物送達法は、Panc02における主要な応用分野として台頭している。Liらは、トリプトライドを負荷したクコ多糖類で安定化されたセレンナノ粒子が、遊離のトリプトライドと比較してPan02細胞において有意に低いIC50値を示し、酸依存性の持続的な薬物放出を行うことを実証した。 [11] Geらは、インテグリンαvβ3–RGDおよびSR-A–デキストラン硫酸塩の相互作用を活用し、腫瘍への選択的蓄積を実現した。[12] これらの研究は総じて、Panc02がナノ製剤の最適化に向けた、in vitroおよびin vivoの両方において汎用性の高いスクリーニングプラットフォームとして機能することを示している。

Panc02で検証されたその他の薬剤送達技術の革新例としては、エクソソームを用いた3剤配合製剤やアルブミンナノ粒子システムなどが挙げられる。 Zhangらは、骨髄間葉系幹細胞由来のエキソソームに、ガレクチン-9 siRNA、ゲムシタビンプロドラッグ、およびインドシアニングリーンを封入し、pH依存的な薬物放出により膵臓がん細胞のアポトーシスが促進されることを実証した。 [13] Wenらは、α-ソラニンを封入した塩酸ポリアリルアミン修飾ウシ血清アルブミンナノ粒子を開発し、Panc02細胞の増殖、遊走、浸潤を効果的に抑制することを示した。 [14] Kongらは、PANC02細胞膜由来の抗原を用いたCGT-Cls-PTX/CMナノ共同送達システムを設計し、パクリタキセルと腫瘍抗原を同時に送達することで、樹状細胞の成熟を促進し、免疫抑制を緩和した。[15]

免疫療法および免疫調節

Panc02同系移植モデルは免疫能を有しているため、免疫療法戦略の評価に特に適している。 オリーブオイル由来のポリフェノールであるヒドロキシチロソールは、in vitroにおいてSTAT3/サイクリンD1シグナル伝達経路を介してPanc02細胞の増殖を抑制することが示された。一方、同所性腫瘍を有するマウスでは、腫瘍の増殖を抑制し、骨髄由来抑制細胞(MDSC)を減少させ、 M1型マクロファージの分極を促進したことが示された。[16] この研究は、Panc02同種移植モデルが、候補薬剤の直接的な細胞毒性効果と免疫調節メカニズムの両方を同時に評価できることを実証した。

Panc02モデルを用いたマイクロバイオームに基づく免疫療法の研究も行われている。 Liらは、Panc02腫瘍の同所性移植を用いた詳細なマウス研究を行い、5-フルオロウラシルと組み合わせた糞便微生物叢移植(FMT)を評価した。その結果、FMTが腸内微生物叢の構成を調節し、全身の免疫応答を増強することで、抗腫瘍効果を向上させることが示された。[17] Vruzhajらは、PANC02を用いた免疫療法モデルにおいて、グリピカン-1の経口送達ベクターとして遺伝子改変大腸菌Nissle 1917を試験し、経口がんワクチン開発に向けた一歩として、改変PANC02細胞におけるGPC1-フラジェリン融合タンパク質の発現と安定性を確認した。 [18] これらの研究は、膵臓がん免疫療法の調節因子としての消化管マイクロバイオームに対する関心の高まりを反映している。

腫瘍溶解性ウイルス療法は、Panc02の文脈で研究されているもう一つの免疫療法法である。 Panc02を含むC57BL/6系統の膵臓腺癌(PDAC)細胞株間の腫瘍内異質性を比較した研究では、腫瘍溶解性水疱性口内炎ウイルスの有効性が同系細胞株間で著しく異なることが示され、Panc02はウイルス感受性の差異を文脈化する基準点として機能した。 この研究は、腫瘍溶解性ウイルス療法の成果を解釈する際に細胞の異質性が重要であることを強調するとともに、腫瘍の免疫回避を克服するための併用療法の設計に有益な知見をもたらした。

転移および腫瘍進行のメカニズム

Panc02 は、PDAC の転移の分子的基盤を研究するために、進行性の転移性派生株を生成する上で重要な役割を果たしてきた。 Wangらは、反復的な同所性移植と肝微小転移の分離を通じてPanc02-H7系統を確立し、Panc02-H7に至るまで、侵襲性が徐々に高まる一連の亜系統を作り出しました。Panc02-H7は、腹膜への播種および肝臓や肺への遠隔転移を示しました。 [4] このモデルは、免疫能を有する宿主における血行性および腹膜性転移の広がりを研究するための、臨床的に意義のある最初のプラットフォームの一つとなった。

さらに最近では、高橋・山城らは、3回の連続的な同所性移植サイクルを通じて、高度に転移能を持つPanc02-3P派生細胞株を樹立した。 [19] RNAシーケンシングにより、親株であるPanc02と比較してPanc02-3P細胞において間葉系様遺伝子発現の変化が明らかになり、標準的な上皮間葉転換(EMT)転写因子の変化が認められない場合でも、リシルオキシダーゼファミリーのメンバーがPDACの進行における新たな分子標的であることが示唆された。 Panc02の生物学的特性における上皮間葉転換(EMT)の役割については、Wangらによってさらに詳しく検討され、フラボノイド誘導体であるFV-429が、Hippo/YAP1経路およびEMT関連タンパク質を調節することで、膵癌細胞の遊走および浸潤を抑制することが示された。[20]

侵襲性の高いPDACの特徴である神経周囲浸潤(PNI)についても、Panc02を用いて検討が行われた。Huaらは、Panc02-luc細胞を同所的に移植して神経周囲浸潤モデルを確立し、PNI陽性のPDACにおいてSlc26a9の発現が著しく上昇していることを実証した。 [21] メカニズムに関する研究では、Slc26a9が腫瘍を有するマウスにおいて不安様行動や機械的痛覚過敏を促進することが示唆され、腫瘍の生物学と臨床的に関連する疼痛表現型との関連性が明らかになった。 Zhangらはさらに、Panc02を用いた皮下および同所性肝転移モデルを用いて、加齢関連因子であるEMP1が膵臓がんの進行を加速させる役割を解明し、EMP1の過剰発現が腫瘍の増殖と転移を促進することを実証した。[22]

光力学療法および物理的切除療法

Panc02細胞は、光力学療法(PDT)および物理的切除療法の適切な試験系として用いられてきた。Xuらは、ピロフェオフォルビドaを基盤としたオルガネラ標的型光増感剤のパネルを合成し、ミトコンドリア、 リソソーム、小胞体、および核を標的とする変異体を評価し、重要な細胞内部位に活性酸素種を集中させ、PDTの有効性を高める能力について検証した。試験はPanc02を含む複数のがん細胞株で実施された。 [23] この体系的な比較により、従来の光増感剤の限界を克服する戦略としてのオルガネラ標的化に関するメカニズムの知見が得られた。

Wangらは、Panc02細胞および皮下異種移植マウスにおいて、低周波超音波刺激マイクロバブル(USMB)と高周波アブレーション(RFA)の併用療法を評価した。 [24] CCK-8アッセイにより、併用療法によってPanc02細胞の増殖が有意に抑制されることが示され、腫瘍を有するマウスでは生存期間の延長および免疫関連因子やアポトーシス関連因子の調節が認められた。 本研究は、物理的切除法と腫瘍微小環境に対する超音波動的撹乱を組み合わせる可能性を実証したものであり、この概念は免疫能を有するPanc02モデルにおいてのみ検証可能である。

結論

Panc02(CVCL_D627)は、膵管腺癌の同系かつ免疫能を有するマウスモデルとして、膵臓がん研究において中心的な位置を占めている。 1984年にC57BL/6マウスにおける化学発癌によって樹立されて以来 [1]、現在では薬物送達ナノテクノロジー、腫瘍微小環境免疫学、腫瘍溶解性ウイルス療法、転移生物学など幅広い分野で活用されており、この細胞株は驚くべき科学的寿命を誇っています。 Partecke ら [5] によって十分に実証されているその同所性移植特性と、最新の生物発光イメージングとの互換性により、この細胞株は膵臓腫瘍に対する新規治療法の非臨床評価を行うための、汎用性が高く厳密なプラットフォームとなっています。 貴研究室が膵管型癌の研究を行っている場合でも、治療反応における消化管マイクロバイオームの役割を解明している場合でも、あるいは次世代ナノ粒子送達システムを開発している場合でも、Panc02は科学的に検証された基盤を提供します。cition.comにアクセスして、製品の詳細仕様をご覧になるか、研究用のPanc02細胞をご購入ください。

主な論文

  1. Corbett TH, Roberts BJ, Leopold WR (1984) C57BL/6マウスにおける2種の移植可能な膵管腺癌の誘導および化学療法反応。Cancer Research. PMID: 6692374
  2. Wang Y, Zhang Y, Yang J (2012) マウス膵臓がん細胞における主要遺伝子のゲノムシーケンシング。Current Molecular Medicine. PMID: 22208613
  3. Torres MP、Rachagani S、Souchek JJ (2013) 自然発生性膵管腺癌の遺伝子改変マウスモデルから樹立された新規膵癌細胞株:診断および治療への応用。PloS One. PMID: 24278292
  4. Wang B、Shi Q、Abbruzzese JL (2001) 転移性膵腺癌の生物学および治療に関する、臨床的に意義のある新規動物モデル。International Journal of Pancreatology. PMID: 11558631
  5. Partecke LI、Sendler M、Kaeding A (2011) Panc02および6606PDA細胞株を用いたC57/BL6マウスにおける膵腺癌の同系同所性マウスモデル。European Surgical Research. PMID: 21720167
  6. Gnerlich JL、Mitchem JB、Weir JS (2010) 腫瘍微小環境におけるTh17細胞の誘導は、膵臓がんのマウスモデルにおいて生存率を改善する。『Journal of Immunology』 PMID: 20805420
  7. Gao M、Kechagia S、Ramachandran M (2026) 膵臓がんモデルにおける免疫応答の改善のための補体カスケードの増幅による腫瘍微小環境の形成。Molecular Cancer Therapeutics。PMID: 41159389
  8. Park Y、Kim ST、Kim YM (2025) ストレプトゾトシン誘導によるPanc02移植マウスモデルにおいて、アプタマーを用いた循環腫瘍細胞の検出により評価した、膵臓がんにおける糖尿病関連炎症の役割。『Annals of Hepato-Biliary-Pancreatic Surgery』 PMID: 40759530
  9. Takhsha FS、Vangestel C、Tanc M (2021) ATG4B阻害剤UAMC-2526は、膵管腺癌のPanc02マウスモデルにおいてゲムシタビンの化学療法効果を増強する。『Frontiers in Oncology』. PMID: 34868951
  10. Zhang Z、Zhang F、Yang W (2026) 抗生物質-薬剤複合体:腫瘍内細菌の除去による膵臓がんに対するゲムシタビンの化学免疫療法の強化。Biomaterials。PMID: 42302584
  11. Li X、Su Y、Lin N (2025) クコ多糖類で安定化されたセレンナノ粒子によるトリプトライドの送達:in vitroおよびin vivoにおける膵臓がんのアポトーシス誘導。ACS Omega。PMID: 40352487
  12. Ge Y、Zhu X、Zhang Z (2025) 膵臓がん治療において、腫瘍細胞とM2様腫瘍関連マクロファージ(TAM)の両方を標的としたアポトーシスを誘導するための、トリプトライドを負荷したRGDペプチド/デキストラン硫酸塩ベースのナノキャリア。International Journal of Biological Macromolecules. PMID: 40345287
  13. Zhang R、Zhang Y、Hao F (2025) エクソソームを介した3剤併用薬物送達が膵臓がん細胞のアポトーシスを増強する。Apoptosis: An International Journal on Programmed Cell Death. PMID: 40488835
  14. Wen Z、Luo S、Liu J (2025) 膵臓がんの化学療法のための、α-ソラニンを担持した塩酸ポリアリルアミン修飾ウシ血清アルブミンナノ粒子。『International Journal of Nanomedicine』。PMID: 40225222
  15. Kong Y、Zhao J、Xu B (2026) 腫瘍微小環境を標的とするCGT-Cls-PTX/CMナノデリバリーシステムの構築と相乗効果。『Nanotechnology』。PMID: 41554179
  16. Wang B、Yang L、Liu T (2021) ヒドロキシチロソールは、同所性膵腫瘍を有するマウスにおいてMDSCを抑制し、M1型マクロファージを促進する。『Frontiers in Pharmacology』. PMID: 34858184
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  18. Vruzhaj I、Gambirasi M、Busato D (2025) 腸内微生物叢に基づく免疫療法:膵臓がんにおけるグリピカン-1の経口送達を目的とした改変大腸菌Nissle 1917。Medicina (Kaunas, Lithuania)。 PMID: 40282924
  19. Takahashi-Yamashiro K、Miyauchi K、Shimomura K (2026) 同系同所性モデル由来の高度に転移性膵臓がん細胞におけるリシルオキシダーゼファミリーメンバーのin vitro機能解析。BMC Cancer。PMID: 42298507
  20. Wang Z、Pan X、Ma X(2025)FV-429は、膵臓がん細胞においてHippo/YAP1経路を介してEMTによるがん細胞の遊走および浸潤を抑制する。Anti-Cancer Drugs. PMID: 40071582
  21. Hua B、Huang X、Chen L (2025) Slc26a9はマウスにおける膵癌の神経周囲浸潤を促進する。Biochemical and Biophysical Research Communications. PMID: 41232379
  22. Zhang J、Gu J、Zhang T (2025) 切除可能膵癌の進行促進における老化プロセスおよび関連因子EMP1の役割。『Genes & Diseases』。PMID: 40612666
  23. Xu Y、Zeng W、Liu R (2026) がんの光力学療法を強化するためのオルガネラ標的型光増感剤。Bioconjugate Chemistry. PMID: 42186767
  24. Wang H、Ding W、Shi H (2021) 膵臓がんに対する相乗的治療法としての低周波超音波照射と高周波アブレーションの併用療法。Bioengineered. PMID: 34696663
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