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HROC300 T2 M1
Gewebe
Kolorektal
Krankheit
Adenokarzinom, TNM-Stadium T4aN1bM1R2L0V1, Grading G2, Lk(n) + 3, ∑ Lk(n) 22
Metastasenherd
Fernmetastasen vorhanden (TNM M1; Stadium T4aN1bM1R2)

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HROC300 T2 M1

Cell line · Artikelnummer 300866

HROC300 T2 M1 ist eine menschliche Kolorektalkarzinom-Zelllinie, die aus einer Primärtumorprobe gewonnen wurde, die bei einem erwachsenen Patienten im Rahmen des HROC-Projekts (Hansestadt R...) reseziert wurde...

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Auftragsfertigung
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01Allgemeine Informationen

Beschreibung

HROC300 T2 M1 ist eine humane kolorektale Karzinomzelllinie, die aus einer Primärtumorprobe stammt, die einem erwachsenen Patienten im Rahmen der HROC-Modellsammlung (Hansestadt Rostock Colorectal Cancer) entnommen wurde. Die Bezeichnung „T2” gibt an, dass der Tumor bei einem zweiten chirurgischen Eingriff entnommen wurde, während „M1” das entsprechende In-vitro-Modell bezeichnet, das aus dieser Probe hergestellt wurde. Die HROC-Plattform integriert umfassendes Biobanking mit der standardisierten Herstellung von patientenabgeleiteten Xenotransplantaten (PDX) und permanenten Zelllinien mit geringer Passagenzahl und ermöglicht so molekular annotierte Tumormodelle aus aufeinanderfolgenden Darmkrebsfällen.

Die Etablierung von HROC300 T2 M1 erfolgte nach einem standardisierten Protokoll, das die mechanische Dissoziation von frisch reseziertem Tumorgewebe, die Filtration zur Gewinnung von Einzelzellsuspensionen und die Aussaat auf kollagenbeschichtete Kulturplatten in definiertem Tumorzellkulturmedium, ergänzt mit Glutamin, Antibiotika und Antimykotika, umfasste. In der gesamten HROC-Kohorte wurden aus etwa 13 % der untersuchten kolorektalen Karzinomproben permanente Primärzelllinien erzeugt, wobei die erfolgreiche Etablierung in der univariaten Analyse mit einem höheren Tumorgrad und einem fortgeschrittenen Lymphknotenstatus korrelierte. Die multivariate Analyse identifizierte die Lymphknotenbeteiligung als unabhängigen Prädiktor für die erfolgreiche Etablierung eines In-vitro-Modells. Diese Ergebnisse spiegeln die Anreicherung biologisch aggressiver Phänotypen unter den erfolgreich adaptierten Kulturen wider.

Innerhalb der breiteren HROC-Sammlung umfassen die Modelle alle wichtigen molekularen Subtypen des kolorektalen Karzinoms, einschließlich chromosomaler Instabilität (CIN), CpG-Insel-Methylator-Phänotyp (CIMP), mikrosatellitenstabiler (MSS) und mikrosatelliteninstabiler (MSI-H) Tumoren sowie verschiedener Mutationshintergründe, die Gene wie KRAS, BRAF, TP53, APC und PIK3CA. HROC300 T2 M1 wurde in diesem streng annotierten Kontext generiert, was die Integration mit passenden klinisch-pathologischen Daten und, sofern verfügbar, entsprechendem PDX-Material ermöglicht. Als Low-Passage-Modell für kolorektales Karzinom, das von Patienten stammt, eignet sich HROC300 T2 M1 für Studien zur Tumorbiologie, zu Genotyp-Phänotyp-Assoziationen und für präklinische therapeutische Tests im Rahmen der Präzisionsonkologie.

Gewebe
Kolorektal
Krankheit
Adenokarzinom, TNM-Stadium T4aN1bM1R2L0V1, Grading G2, Lk(n) + 3, ∑ Lk(n) 22
Metastasenherd
Fernmetastasen vorhanden (TNM M1; Stadium T4aN1bM1R2)
Anwendungen
Darmkrebsforschung; kolorektales Adenokarzinom (MSS); HROC-Linnebacher-Biobank; Arzneimittelsensitivität; Modellierung von Darmkrebs im fortgeschrittenen Stadium; Tumorbiologie

02Klassifizierung

Organismus
Mensch
Sex
Männlich
Wachstumseigenschaften
Anhänger
GVO-Status
Ohne Gentechnik
Angaben zum GVO-Status
No genetic modification; wildtype patient-derived CRC cell line (HROC Linnebacher biobank).
Biologische Sicherheitsstufe
1

03Merkmale

Morphologie
Epithelähnlich
Zelltyp
Epithelzellen
MSI-Status
MSS

04Bezeichner

Quellenangabe
HROC300 T2 M1 (Cytion Katalognummer 300866)
NCBI-Steuer-ID
9606
Cellosaurus
CVCL_VQ94

05Handhabung und Kultur

Nährmedium
DMEM:Ham's F12 (1:1), w: 3,1 g/L Glucose, w: 2,5 mM L-Glutamin, w: 15 mM HEPES, w: 0,5 mM Natriumpyruvat, w: 1,2 g/L NaHCO3 (Cytion-Artikelnummer 820400a)
Inkubationsatmosphäre

37°C, 5%CO2, befeuchtete Atmosphäre.

Nahrungsergänzungsmittel
Ergänzen Sie das Medium mit 10% FBS
Dissoziationsreagenz
Accutase
Subkultivierung
Entfernen Sie das alte Medium von den adhärenten Zellen und waschen Sie sie mit PBS, das kein Kalzium und Magnesium enthält. Für T25-Kolben 3-5 ml PBS und für T75-Kolben 5-10 ml verwenden. Anschließend werden die Zellen vollständig mit Accutase bedeckt, wobei 1-2 ml für T25-Kolben und 2,5 ml für T75-Kolben verwendet werden. Lassen Sie die Zellen 8-10 Minuten bei Raumtemperatur inkubieren, um sie abzulösen. Nach der Inkubation mischen Sie die Zellen vorsichtig mit 10 ml Medium, um sie zu resuspendieren, und zentrifugieren sie dann 3 Minuten lang bei 300xg. Den Überstand verwerfen, die Zellen in frischem Medium resuspendieren und in neue Kolben überführen, die bereits frisches Medium enthalten.
Flüssigkeitswechsel
Alle 3 bis 5 Tage
Auftauen und Kultivierung
  1. Confirm that the vial remains deeply frozen upon delivery, as cells are shipped on dry ice to maintain optimal temperatures during transit.

  2. Upon receipt, either store the cryovial immediately at temperatures below -150°C to ensure the preservation of cellular integrity, or proceed to step 3 if immediate culturing is required.

  3. For immediate culturing, swiftly thaw the vial by immersing it in a 37°C water bath with clean water and an antimicrobial agent, agitating gently for 40-60 seconds until a small ice clump remains.

  4. Perform all subsequent steps under sterile conditions in a flow hood, disinfecting the cryovial with 70% ethanol before opening.

  5. Carefully open the disinfected vial and transfer the cell suspension into a 15 ml centrifuge tube containing 8 ml of room-temperature culture medium, mixing gently.

  6. Centrifuge the mixture at 300 x g for 3 minutes to separate the cells and carefully discard the supernatant containing residual freezing medium.

  7. Gently resuspend the cell pellet in 10 ml of fresh culture medium. For adherent cells, divide the suspension between two T25 culture flasks; for suspension cultures, transfer all the medium into one T25 flask to promote effective cell interaction and growth.

  8. Adhere to established subculture protocols for continued growth and maintenance of the cell line, ensuring reliable experimental outcomes.

06Qualitätskontrolle und Kryokonservierung

Sterilität

Eine Kontamination mit Mykoplasmen wird sowohl durch PCR-basierte Assays als auch durch lumineszenzbasierte Mykoplasmen-Nachweisverfahren ausgeschlossen.

Um sicherzustellen, dass keine Kontamination mit Bakterien, Pilzen oder Hefen vorliegt, werden die Zellkulturen täglich visuell überprüft.

Gefriermedium
Als Kryokonservierungsmedium verwenden wir komplettes Wachstumsmedium (einschließlich FBS) + 10 % DMSO für eine angemessene Lebensfähigkeit nach dem Auftauen oder CM-1 (Cytion Katalognummer 800100), das optimierte Osmoprotektoren und Stoffwechselstabilisatoren enthält, um die Erholung zu verbessern und kryoinduzierten Stress zu reduzieren.
Lagerbedingungen

Zur Langzeitkonservierung werden die Fläschchen in flüssigem Stickstoff bei etwa -150 bis -196 °C gelagert. Eine Lagerung bei -80 °C ist nur als kurzer Zwischenschritt vor der Überführung in flüssigen Stickstoff akzeptabel.

Versandbedingungen

Kryokonservierte Zelllinien werden auf Trockeneis in einer validierten, isolierten Verpackung mit ausreichend Kühlmittel versandt, um während des gesamten Transports eine Temperatur von etwa -78 °C aufrechtzuerhalten. Prüfen Sie den Behälter bei Erhalt sofort und bringen Sie die Fläschchen unverzüglich in ein geeignetes Lager.

07Spender

Alter des Spenders
73 Jahre
Ethnische Zugehörigkeit
Kaukasisch